重庆疫苗产品支原体检测NAT法

长期以来，支原体检测主要依赖培养法和指示细胞法，且法规通常要求两种方法同时使用，但这两类方法存在明显短板——培养法检测周期长达 28 天，指示细胞法也需较长时间等待结果。随着细胞疗法药物快速发展，其上市周期短、货架期有限的特点，使得传统方法难以满足药物放行的时效要求。核酸扩增技术（NAT）尤其是荧光探针 qPCR 检测方法的出现，凭借检测速度快、特异性强的优势，成为支原体检测的理想替代方案。作为替代方法，NAT 检测需通过严格验证以达到法规要求的灵敏度：检测限达到 10CFU/mL 可替代培养法，达到 100CFU/mL 可替代指示细胞培养法，从而实现快速且可靠的支原体筛查。

支原体 NAT 检测的特异性验证面临主要挑战：需设计覆盖多种支原体的 PCR 引物，而覆盖范围越广，越可能因支原体与革兰氏阳性菌的系统进化相关性，出现交叉检测现象，影响结果准确性。因此，特异性验证需重点排查非目标微生物的干扰，确保检测结果的专一性。稳健性验证同样关键，需证实检测方法在人为引入的微小参数变化（如反应温度、试剂浓度波动等）下，仍能保持结果稳定，避免因实验条件差异导致的检测偏差。这两项验证直接决定了 NAT 方法在不同实验室、不同操作场景下的适用性，是其获得法规认可的重要前提。

目前支原体检测主要有培养法、指示细胞培养法和核酸扩增技术（NAT）法三类，三者在性能与适用场景上差异明显。培养法作为检测金标准，灵敏度极高，但检测周期长达 28 天，手动操作需数天，依赖较高水平的操作技能，且因使用活菌株作为阳性质控，污染风险高，需在特殊实验室开展，检测前还需进行培养基灵敏度验证。指示细胞培养法为药典认可的传统方法，成本较低，但检测周期仍需 14-20 天，灵敏度偏低，同样存在活菌株污染风险，无法满足快速放行需求。NAT 法（核酸扩增法）检测周期只需 3-7 小时，手动操作时间为数小时，采用灭活菌株降低污染风险，样本需求量少、灵敏度高，但无法区分死菌与活菌，且需要开展充分验证，对操作人员的专业技能有一定要求，已逐步成为生物制药企业产品放行检测的youxia方案。

湖州申科的支原体检测方案已在多个领域积累了丰富的客户申报案例，覆盖细胞疗法、抗体药物、疫苗、CRO/CDMO 等细分赛道。在细胞疗法领域，方案成功应用于已上市药物的方法变更，替换进口试剂盒并通过中检院复核，验证结果获得 CDE 认可用于产品放行检测在抗体药物领域，支持多家企业完成 BLA 申报；在疫苗与 CRO/CDMO 领域，为诸多头部企业提供 IND 申报支持。方案的应用场景涵盖从 IND 到 BLA/NDA 的全申报周期，适配自动化提取 + 检测试剂盒 + 菌株 + qPCR 仪、外源因子一体机等多种配置，满足不同企业的个性化检测需求，获得市场认可。

针对不同类型的样品基质，需采用定制化的支原体检测前处理方案，以消除干扰、提升检测效果。细胞悬液需经热处理、样品处理液作用、细胞碎片去除、浓缩离心，再 55℃消化；上清或高浓度质粒样品需先浓缩离心，再用样品处理液作用后 55℃消化；5% 人血白蛋白样品则采用浓缩离心 + 样品处理液作用 + 25℃消化的流程。常见干扰基质包括冻存保护剂、高浓度细胞、代谢产物等，优化前处理可遵循三大原则：提取前通过离心取上清或去除抑制剂预处理样品；高浓度蛋白样本提取时增加蛋白酶 K 用量，增强蛋白降解效果；细胞类样品适当降低细胞数或先裂解细胞，减少细胞基质对检测的干扰。

湖州申科生物构建了完整的支原体检测解决方案，包含支原体 DNA 提取纯化试剂盒与检测试剂盒两大产品。提取纯化试剂盒采用磁珠法技术，具有回收率高、样品兼容性强的优势，配合湖州申科 rHCDpurify^®前处理系统可实现自动化提取操作，大幅提升检测效率并减少人为误差。检测试剂盒采用 PCR - 荧光探针法，覆盖近200种支原体 DNA 序列，检测专一性强，且对不同品牌 PCR 仪器具有良好的适用性，性能稳定可靠。产品规格明确，提取试剂盒可处理 50 个样品，检测试剂盒可完成 50 次反应，整套体系从样品前处理到定性检测形成闭环，满足生物制品生产各环节的支原体筛查需求。