河北生物制品支原体检测可比性验证

目前支原体检测主要有培养法、指示细胞培养法和核酸扩增技术（NAT）法三类，三者在性能与适用场景上差异明显。培养法作为检测金标准，灵敏度极高，但检测周期长达 28 天，手动操作需数天，依赖较高水平的操作技能，且因使用活菌株作为阳性质控，污染风险高，需在特殊实验室开展，检测前还需进行培养基灵敏度验证。指示细胞培养法为药典认可的传统方法，成本较低，但检测周期仍需 14-20 天，灵敏度偏低，同样存在活菌株污染风险，无法满足快速放行需求。NAT 法（核酸扩增法）检测周期只需 3-7 小时，手动操作时间为数小时，采用灭活菌株降低污染风险，样本需求量少、灵敏度高，但无法区分死菌与活菌，且需要开展充分验证，对操作人员的专业技能有一定要求，已逐步成为生物制药企业产品放行检测的youxia方案。

湖州申科生物构建了完整的支原体检测解决方案，包含支原体 DNA 提取纯化试剂盒与检测试剂盒两大产品。提取纯化试剂盒采用磁珠法技术，具有回收率高、样品兼容性强的优势，配合湖州申科 rHCDpurify^®前处理系统可实现自动化提取操作，大幅提升检测效率并减少人为误差。检测试剂盒采用 PCR - 荧光探针法，覆盖近200种支原体 DNA 序列，检测专一性强，且对不同品牌 PCR 仪器具有良好的适用性，性能稳定可靠。产品规格明确，提取试剂盒可处理 50 个样品，检测试剂盒可完成 50 次反应，整套体系从样品前处理到定性检测形成闭环，满足生物制品生产各环节的支原体筛查需求。

阴性翘尾是支原体 NAT 检测中常见的异常现象，表现为 NCS 或 NTC 出现扩增信号，Ct 值多在 35~40 之间，需科学评估并处理。首先考虑污染因素，可能是阴性对照被阳性样本、试剂或环境气溶胶污染，建议立即复测，复测时使用带滤芯低吸附 TIP 头，严格执行阴阳性分区操作，注重细节防控。其次需排除背景信号等非典型性扩增的干扰，避免误判为污染。若前期验证中频繁出现 NTC 或 NCS 扩增，且已彻底排除污染可能性，可结合已有实验数据重新设置 Cut off 值，确保阈值线能有效区分真实阳性与背景信号，满足实验室检测需求。

支原体 NAT 检测的准确性与可靠性受多重因素综合影响，需从人员、方法、设备、试剂耗材、实验室环境五方面严格把控。人员需接受专业培训，熟练掌握 PCR 技术理论与实操流程，积累足够经验并具备责任心，确保操作规范性。方法建立需遵循合理流程并完成充分验证，避免因方法缺陷导致结果偏差。设备方面，PCR 仪与前处理设备的性能、精度、稳定性及定期校准至关重要，直接影响检测数据的重复性。试剂耗材需满足要求：前处理试剂能应对复杂样本基质、耐受常见干扰，检测试剂经性能验证且批间稳定性良好，同时需选用质量合格的耗材。实验室需合理布局，建立完善的管理规范与污染防控措施，为检测提供洁净、可控的环境，避免外部因素干扰。

湖州申科构建了具有完备资质的支原体技术服务平台，为企业提供多元化支持。平台拥有 BSL-2/P2 微生物实验室备案资质，遵循 GMP-like 质量体系，具备支原体培养法、指示细胞法与 qPCR 法的检测及验证能力，配备符合药典要求的支原体标准菌株库与高灵敏度培养基（含液体、固体、半流体）。企业已通过 ISO13485:2016 质量管理体系认证（证书号 MD 709873），检测中心获得 CNAS 认证（注册号 CNAS L21942），符合 ISO/IEC 17025:2017 标准，具备国际互认资质。平台可提供多元化技术服务，包括支原体 qPCR 法检测能力建立、实验员能力考核、质量体系与流程搭建、实验室设计方案优化，以及样品检测（三种方法）、样品适用性验证、方法学验证、传统法与 qPCR 法比对、特殊菌株定制生产等，申报阶段可配合客户与监管机构完成现场审计。

支原体 NAT 检测的特异性验证面临主要挑战：需设计覆盖多种支原体的 PCR 引物，而覆盖范围越广，越可能因支原体与革兰氏阳性菌的系统进化相关性，出现交叉检测现象，影响结果准确性。因此，特异性验证需重点排查非目标微生物的干扰，确保检测结果的专一性。稳健性验证同样关键，需证实检测方法在人为引入的微小参数变化（如反应温度、试剂浓度波动等）下，仍能保持结果稳定，避免因实验条件差异导致的检测偏差。这两项验证直接决定了 NAT 方法在不同实验室、不同操作场景下的适用性，是其获得法规认可的重要前提。