广东医疗器械内毒素检测凝胶法鲎试剂

检测细菌内毒素的堂试剂方法，是一个生物反应过程，受到很多因素的干扰。在一个供试品的检测方法固定下来之前，为了得到准确的结果，必须要了解供试品与鲎试剂之间的相互关系。供试品中的成分往往非常复杂，而且会干扰试验检测系统的功能。很多干扰的机理，并不是非常清楚。但是业界比较能够接受的理论是，如果供试品中某些因子影响了鲎试剂中蛋白的表达功能，则被认为是干扰作用（Inhibition/Enhancement，V/E）。干扰作用产生的因素较多，一般包括试剂因素（鲎试剂、内毒素标准品）供试品因素（pH值、温度、离子强度、浓度、水溶性、黏度、可发生鲎试剂反应的非内毒素杂质）和实验因素（试验器皿、细菌内毒素检查用水、鲎试剂抗干扰能力）等。

内毒素检测的实验方案需遵循“标曲可靠性验证（灵敏度复核）-稀释倍数计算-干扰试验”的完整流程，以保障检测结果准确合规。首先进行标曲可靠性试验，用标准内毒素制备至少3个浓度的稀释液（相邻浓度间稀释倍数不超过10，下限浓度不低于鲎试剂标示检测限），每浓度设 3 支平行管，同时做2支阴性对照；当阴性对照的吸光度小于或透光率大于标准曲线下限的检测值或反应时间大于标准曲线下限的反应时间，对数据进行线性回归，相关系数r的幅值≥0.980时试验方有效，否则需重新操作。接着按公式 L=K/M 确定样本内毒素限值，K 值依给药途径而定，M结合人均60kg体重、1.62m² 体表面积及上限给药剂量计算，也可参考药典行标。随后明确有效稀释上限倍数（MVD），即供试品允许稀释的上限倍数，确保在此范围内检测限值。再开展样本干扰试验，制备供试品溶液（A）、供试品加标溶液（B，加标浓度为标曲中点）、标准曲线溶液（C）及阴性对照（D），按公式 R=(Cs-Ct)/λm×100%计算加标回收率，50%-200%为合格；若鲎试剂、生产工艺等发生变化，需重新进行干扰试验，保障内毒素检测的可靠性。

如何准备样品进行内毒素检测呢？测试前，需要根据样品实际情况进行样本前处理。大多数样品只需要稀释，使用内毒素检测试剂盒进行测试即可。如果样品有蛋白酶干扰并导致假阳性结果，建议对样品稀释并70°C加热5-15分钟进行热灭活处理。如需要，可以对灭活样品进行进一步稀释后检测。如果样品可能含有受β-葡聚糖，建议使用抗增液。β-葡聚糖可能来自酵母和纤维素材料。如果样品中因含有内毒素结合物而存在抑制，可以尝试使用分散剂。

针对单核细胞活化反应测定法（MAT）通过检测内毒素的生物活性，有效规避低内毒素回收（LER）对內毒素检测的影响。其原理是：热原（包括被掩蔽的 LPS）活化单核细胞表面的 TLR 受体，释放 IL-6 等细胞因子，通过 ELISA 检测 IL-6 浓度，结合标准曲线推算热原含量。即使 LPS 因 LER 改变超分子结构，只要仍具生物活性，就能被 MAT 法识别。这种 “检测活性而非结构” 的特性，使 MAT 法成为 LER 场景下内毒素检测的重要补充，与其他方法协同构建高效可靠的热原防控体系。

湖州申科重组级联试剂（rCR）在关键性能指标上表现优异，满足内毒素检测的严苛要求。灵敏度方面，其检测范围覆盖 0.005-5EU/mL，可准确捕捉微量内毒素残留，适配基因治疗、血液制品等低限值需求场景。标准曲线线性良好，R²≥0.990，确保定量结果的准确性。反应效率上，rCR 只需 60 分钟即可完成检测，较部分竞品的 90-120 分钟大幅缩短，提升检测周转效率。抗干扰性实验显示，对细胞培养辅料、300g/L 葡萄糖、FBS 血清、单抗等 8 类复杂样品，rCR 在较低稀释倍数下加标回收率可达 70%-175.4%，优于重组 C 因子法。批间一致性方面，多批次试剂检测同一样品的 CV 值≤15%，稳定性远超行业平均水平，为长期质控提供可靠保障。

β- 葡聚糖是鲎试剂（LAL）检测内毒素的常见干扰物，可活化 LAL 中的 G 因子通路，导致假阳性结果。干扰多见于含植物源原料的样品（如中药注射剂）、生物发酵产物或环境真菌污染的样品。消除方法包括：使用特异性 LAL 试剂（如添加葡聚糖抑制剂的 LAL），其只对内毒素敏感而不受 β- 葡聚糖影响；采用加热处理（如 80℃加热 10 分钟）破坏 β- 葡聚糖结构；或通过亲和层析去除样品中的 β- 葡聚糖。检测时需设置 β- 葡聚糖阳性对照，若对照反应阳性而内毒素标准品无反应，表明存在干扰，需优化前处理步骤后重新检测。