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糖原染色在使用过程中需要注意以下几个方面：Schiff氏染液的配制是关键，尤其是偏重亚硫酸钠的质量，打开应是粉剂，且带有硫的气味，若成团或没有气味，则不能用，配制时使用的容器、药勺、称药天平与称药纸等必须洁净、无污染。新配制好的Schiff剂为无色透明液体[1]，配好后可分成小份置于-20℃保存，用时取一份恢复到室温即可。沈洪武等通过对比染色发现，冷冻保存1年的Schiff液的染色结果与新鲜配制的染色结果一致[5]。0.5％～1％高碘酸（pH值在3.0～5.0之间），环境温度以不高于20℃为宜，室温高时氧化时间适当缩短；如果染色时环境温度较高且高碘酸作用时间长，可使某些物质成分发生非特异反应，使染色结果出现假阳性。因此，室温较高时可适当缩短反应时间。切取的材料应小而薄，便于固定液迅速渗入内部。上海口碑好的糖原染色试剂盒销售厂家

染色的一般原则：1.荧光素产品一般为微量试剂，取用前请离心集液，以及避光保存和使用。建议您在收到产品之后，分装为小份避光保存于-20℃，即用即取。2.式细胞仪只可检测单细胞悬液，如使用组织样本，首先必须制备成单细胞悬液，细胞数量不应低于1X106/ml。3.推荐使用悬浮培养细胞。如果是贴壁细胞，需用不含EDTA的胰酶消化，如消化不当，可能引起假阳性，而用细胞刮子会造成细胞粘连成团，而影响检测。可将胰酶消化后细胞的保存在含2%BSA的PBS中，防止进一步的损伤。江苏如何使用糖原染色试剂盒厂家直销帮助鉴别白血病细胞和腺骨髓转移的腺细胞，腺细胞呈阳性反应。

糖原染色（PAS）：（1）原理：过碘酸将血细胞内的糖原氧化，生成醛基。醛基与雪夫液中的无色品红结合，形成紫色化合物，定位于细胞质中。（2）操作方法：干燥涂片，滴加甲醛固定液固定10分钟，流水冲洗，晾干。滴加过碘酸溶液作用20分钟，流水冲洗，晾干。滴加雪夫液作用60分钟，流水冲洗，晾干。滴加甲基绿溶液复染10分钟，流水冲洗，晾干镜检。（4）临床意义：根据染色阳性程度和阳性物形态鉴别主要用于急性淋巴细胞白血病和急性非淋巴细胞白血病鉴别，还有助于红白血病与巨幼细胞贫血和溶血性贫血的鉴别诊断。

可以通过pas染色计算糖原含量吗：PAS染色又称过碘酸雪夫染色,糖原染色.一般用来显示糖元和其它多糖物质. 具体现象例举：阳性反应,胞浆呈红色,阴性反应,胞浆呈无色；在正常血片中RBC不染色； PLT染成深红色；中性粒细胞胞浆染成红色或深红色,有些细胞有阳性颗粒；单核细胞的胞浆染成淡红色,可含有细小或粗大阳性颗粒；少数淋巴细胞的胞浆内含有少许小的淡红色或红色颗粒；正常骨髓的幼稚细胞和有核RBC都不染色；巨核细胞的胞浆内呈弥散红色或深红色. 巨核细胞的胞浆内呈弥散红色或深红色. 颜色深浅与浓度相关。素染色液100mlHE染色属于常规切片HE染色的明矾苏木素的一种。

糖原D-PAS染色液注意事项：1、切片脱蜡应尽量干冷，否则影响染色效果。需使用一张阳性对照片验证酶的活性。2、过碘酸氧化时间不宜过久，氧化时温度以18～22℃较佳。3、试剂(A)、试剂(B)、试剂(C)、应置于4℃密闭保存，使用时避免接触过多的阳光和空气，使用前较好提前取出恢复到在室温后，避光暗处使用。4、酸性乙醇分化液应经常更换新液，其分化时间应该依据切片厚薄、组织的类别和酸性乙醇分化液的新旧而定，另外分化后自来水冲洗时间应该足够。5、在过碘酸溶液和Schiff Reagent中作用时间非常重要，该依据切片厚薄、组织类别等决定。6、况冶切片染色时间尽量要短。本试剂盒适用于骨髓细胞涂片，血液细胞涂片。天津品牌糖原染色试剂盒服务电话

亚硫酸钠须有浓厚气味，器皿必须洁净而干燥。上海口碑好的糖原染色试剂盒销售厂家

糖原pas染色液配制及使用方法：1、常规固定，常采用 10%的福尔马林，常规脱水包埋。 2、石蜡切片脱蜡入蒸馏水；冰冻切片直接入蒸馏水。 3、自来水冲洗 2～3min，再用蒸馏水浸洗 2 次。 4、入过碘酸溶液，室温放置，一般不宜超过 10min。 5、自来水冲洗 1 次，再用蒸馏水浸洗 2 次。 6、入 Schiff Reagent，置于室温阴暗处浸染。 7、自来水冲洗 10min。 8、入苏木素染色液，染细胞核。 9、酸性乙醇分化液分化。 _x000c_10、自来水冲洗 10～15min，更换蒸馏水清洗，使其返蓝。 11、逐级常规乙醇脱水。二甲苯透明，中性树胶封固。上海口碑好的糖原染色试剂盒销售厂家

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