HE染色观察细胞凋亡，凋亡检测中形态学方法是**直观、可靠的方法之一。对组织和各种细胞进行染色后，在光学显微镜、荧光显微镜或电子显微镜下观察，通过观察细胞的形态或染色的类型来判断凋亡的发生与否。细胞涂片或细胞甩片的制备：对于贴壁细胞，可将盖玻片放于培养器皿中，让培养细胞长于玻片上，然后用药物诱导细胞凋亡后取出，用4%多聚甲醛固定5min。对于悬浮细胞，用药物诱导细胞凋亡后，离心1000r/min收集细胞，用PBS洗2次，收集调整细胞数为1X105/ml，涂片或用离心甩片，用4%多聚甲醛固定5min；在光学显微镜下，贴壁细胞由原来的梭形或多角形变小、变圆，核呈蓝色或蓝黑色，胞浆呈淡红色，核固缩、破碎，形成凋亡小体等。悬浮细胞，整个细胞皱缩，核固缩，破碎，形成凋亡小体，染色质颜色加深等。关于HE染色，常用的结果分析原理。青海推荐的HE染色服务
HE染色在**诊断中的应用尤为重要。通过对**组织切片进行HE染色，病理学家可以观察肿瘤细胞的形态特征，包括细胞大小、形状、核质比、核分裂象等，帮助判断**的类型、恶性程度以及是否存在转移。不同类型的**在HE染色下呈现不同的表现，例如，恶性**的细胞通常较大，核大而不规则，细胞排列松散，而良性**的细胞通常较小，核较规则，细胞排列整齐。通过对**组织的分析，HE染色帮助病理学家作出更为精细的诊断，指导实验检测结果分析。宁夏值得信赖的HE染色分析让您放心的实验外包公司，专业HE染色实验服务平台。
HE染色常见问题：成片的染色模糊不清，灰染答：（1）组织未及时固定，部分自溶；或固定不佳，深部组织未处理到。这种只能重新固定了。（2）尽管乙醇也是一种固定液，但尽量少用或不用，因为其会导致组织发硬变脆，染色效果不好。（3）包埋时蜡的温度过高，或切片后烤片时间和温度过久过高都不好，可能会导致无法染色。（4）脱蜡不彻底；染料有问题；分化过度导致的颜色变淡，镜下组织界限不清；染完后的脱水和透明不佳，水雾残留在组织上。（5）通风窗中（防止空气中的水雾），戴口罩操作封片（减少哈气带来的水雾）。
HE染色常见问题：Q3：细胞核染色过浅，颜色暗淡答：切片在苏木素染液中停留过短，或苏木素过度氧化失效，或分化时间太长。对策：重新染色。将组织切片放入0.01%氢氧化钠、0.5%氨水、饱和的碳酸氢钠溶液、乙醇溶液，每个3-5min即可，接着重新染色。可以适当地组织的嗜碱性以增强核染色，如Zenker液固定的切片可放入5%碳酸氢钠溶液中3h，自来水冲洗5-10min染色，或Bouin液固定的切片可放入5%碳酸氢钠溶液中1h，自来水冲洗10min染色。Q4：细胞核染色过深，胞浆着蓝色答：切片在苏木素染液中停留过长；或切片太厚；或分化时间太短。这种情况首先镜下看看切片厚度(比较好厚度1-2层细胞核)，要么重新染色，要么重新制片。南京英瀚斯，专业的病理染色实验服务平台。HE染色中固定液如何配置。
HE染色法，。苏木精染液为碱 ，主要使细胞核内的染色质与胞质内的核糖体着紫蓝色 ；伊红为酸染料 ，主要使细胞质和细胞外基质中的成分着红色。而线粒体用HE染色不可见，活细胞通常要求活细胞近似无色线粒体需要用健那绿来染色，再在高倍镜下观察。从人或动物新鲜尸体上取下块（一般厚度不超过0.5厘米）投入预先配好的固定液中（10%福尔马林，Bouin氏固定液等）使、细胞的蛋白质变凝固，以防止细胞后的自溶或细菌的分解，从而保持细胞本来的形态结构。一般用由低浓度到高浓度酒精作脱水剂，逐渐脱去块中的水份。再将块置于既溶于酒精，又溶于石蜡的透明剂二甲苯中透明，以二甲苯替换出块的中酒精，才能浸蜡包埋。南京英瀚斯，专业的技术提供专业的HE染色服务。西藏病理HE染色公司
HE染色的实验目的以及实验结果分析。青海推荐的HE染色服务
HE染色等常规染色，组化或是荧光优先推荐做石蜡切片。原因：石蜡切片对组织的形态保存比冰冻切片好，并且对抗原基本无影响。脂质染色（油红O染**odipy染色，尼罗红染色）必须做冰冻切片，不能做石蜡切片。以下染色必须要新鲜或冷冻组织冰冻切片：ROS染**-半乳糖甘酶染色，ATP染色，胆固醇染色。如果标本已经放在-80°冰箱冷冻了之后又想要做石蜡切片，将标本取出来千万不要解冻直接放于固定液内固定（在固定液内边解冻边固定）。组织形态结构保存完好顺序：新鲜组织立即投入固定液内固定石蜡切片＞组织-80°冷冻后投入固定液内固定石蜡切片＞新鲜组织立即投入固定液内固定冰冻切片＞组织-80°冷冻后直接冰冻切片。青海推荐的HE染色服务
