实验鼠销售模式主要是直销模式，即企业直接面向终端客户，包括高校、医院等科研客户以及创新药企、CRO研发企业等工业客户。具体销售时，上述客户或其所属机构、课题组等直接下单。2021年，中国实验鼠产品和服务市场规模约为35亿元。其中，实验鼠行业发展受到国家基础科学研究经费投入、创新药物开发市场景气程度、基因工程技术迭代水平进步等多重因素影响。近年来，伴随着国家密集出台多项政策，实施医药创新驱动战略，带动了实验鼠产业的发展，市场增长速度较快。常州卡文斯实验鼠的繁殖性能稳定，满足大规模实验需求。Rag2小鼠常见问题
在动物实验中，为了观察药物对机能功能、代谢及形态引起的变化，常需将药物注入动物体内。给药的途径和方法是多种多样的，可根据实验目的、实验动物种类和药物剂型等情况确定。实验动物常见的给用用药物使用方法法法式有：口服、静脉注射、腹腔注射、皮下注射、肌肉注射、椎管内注射、脑室内注射、皮内注射、淋巴腔注射、鼻腔和舌下给药等多种。灌胃法小鼠灌胃方法比较简单，需要关注的只有两点：一是要保持小鼠的头部和颈部成一直线，方便灌胃针头进入，二是动作要轻柔，从口角进入，防止损失食道。操作步骤：1.抓住小鼠，使其头、颈和身体呈一直线。2.用1ml的注射器配灌胃针头。灌胃针头从小鼠的嘴角进入，压住舌头，抵住上颚，轻轻向内推进，进入食管后会有一个刺空感，进入食道后就可以推注药液。3.灌胃容积一般是0.1～0.2ml/10g，比较大0.35ml/10g，每只小鼠的灌胃最大容积不超过0.8ml。APC-min小鼠按需定制实验小鼠在高海拔模拟环境中，红细胞数量和血红蛋白浓度逐渐升高以适应低氧。
实验动物常见的给药物使用方法式有：口服、静脉注射、腹腔注射、皮下注射、肌肉注射、椎管内注射、脑室内注射、皮内注射、淋巴腔注射、鼻腔和舌下给药等多种灌胃法经验总结：1.在操作过程中较重要的是小鼠的固定，注意头一定要固定好，头和躯体要保持一条直线，并且灌胃时使小鼠成竖直位，头向上。2.把握要领，动作尽量迅速，减少小鼠的不适感。3.小鼠灌胃剂量：0.1ml/10g体重：一只20g的小鼠，一般一次灌胃0.2ml。4.操作前将灌胃针安在注射器上大致测量一下从口腔到胃内的位置(较终一根肋骨后缘)的长度,根据此距离确定插入深度,成年小鼠插入大约3厘米。5.固定好小鼠,身体比较好伸展在一条直线，太松会动，太紧就把小鼠脖子勒住了。一般沿口角进针，抵达咽部会有抵触感，小鼠会有吞咽动作，此时阻力丧失，可继续下行。
卡文斯隆重推出基于CRISPR/Cas9技术的小鼠基因组编辑服务！CRISPR(ClusteredRegularlyInterspacedShortPalindromicRepeats)/Cas(CRISPR-associated)是近几年出现的一种由RNA指导Cas核酸酶对靶向基因进行特定DNA修饰的技术。它是细菌和古细菌为应对病毒和质粒不断攻击而演化来的获得性免疫防御机制。此系统的工作原理是crRNA(CRISPR-derivedRNA)通过碱基配对与tracrRNA(trans-activatingRNA)结合形成tracrRNA/crRNA复合物，此复合物引导核酸酶Cas9蛋白在与crRNA配对的序列靶位点处剪切双链DNA，从而实现对基因组DNA序列进行编辑；而通过人工设计这两种RNA，可以改造形成具有引导作用的gRNA(guideRNA)，足以引导Cas9对DNA的定点切割。基于CRISPR/Cas9技术，常州卡文斯实验鼠经过严格筛选，确保每一只都符合科研实验的高标准要求。
品系名称:APP/PS1(阿尔兹海默症)品系编号:C000111品系背景:C57BL/6J]品系描述:APP/P51是表达嵌合小鼠/人淀粉样蛋白前体蛋白(MO/HUAPP695-5we)和突变的人早老素1(P51-DE9)的双转基因小鼠，均定向于中间系统神经元。这两种突变都与早发性阿尔茨海默病有关。转基因小鼠在6到7个月大时在大脑中形成B-淀粉样蛋白沉积。6到15个月大的小鼠在B-淀粉样蛋白负荷方面表现出性别差异。同时转基因小鼠伴随一定癫痫发病率，随着小的年龄增加，发病率逐渐升高。应用领域:应用于神经退行性疾病、老年痴呆症等方面的研究。常州卡文斯实验鼠的基因编辑模型高效，助力生命科学领域突破性研究。OT2小鼠周龄
卡文斯实验鼠在神经科学领域的研究中表现优异。Rag2小鼠常见问题
腹腔注射操作步骤：1.抓取小鼠一般都是放在饲养笼上，提其尾巴中部，水平偏下往后轻拉，小鼠爪子会自然会抓住笼子，此时应该迅速抓住小鼠的颈背部的皮毛，比较好是抓在小鼠的耳朵处，这样可以更好固定小鼠的头部，以防被咬。但是，切记力气不要过大，容易使小鼠窒息。再将小鼠的尾巴用左手无名指或小拇指固定，这样就可以将小鼠整个躯干固定好，注意一定要让小鼠处于一个舒服的身身体部位置，如果小鼠躯干不能保持竖直，很容易扎到脏器，引起出血，影响实验。2.注射抓取小鼠后，应腹部向上，头呈低位。头呈低位可以使得脏器移至低位，避免扎伤。右手持注射器，插入小鼠腹部，注射部位为小鼠后肢根部连线处任一侧1.5cm处，缓慢以45度左右进针，进针深度小于1cm，进针的感受为局部皮肤凹陷消失和落空感。3.拔针：为了防止漏液，轻微旋转针头，再缓缓拔出。在实验前，准备酒精棉球，注射器在使用后要消毒才能给下一只小鼠使用，避免交叉染上。此外，注射前，也可以用酒精棉球擦拭小鼠皮肤，可以明显辨别药物是否注射到腹腔，如果看到鼓包，就是注射到皮下了。Rag2小鼠常见问题
