实验动物模型的分类。人类疾病动物模型种类很多，可按不同情况进行分类，按产生原因分类，按系统范围分类，按模型对象分类，按中医体系分类。这里只列举按产生原因分类的情况。按产生的原因可分为自发性动物模型和诱发性动物模型。
自发性动物模型：突变性动物模型(mutantanimalmodels)：指未经任何人工处理，利用动物在自然条件下发生疾病来用作模型。抗病性动物模型(negativeanimalmodels)：是指特定的疾病不会在某种动物身上发生，从而探讨为何这种动物对该病有天然的抵抗力。异构性动物模型(differentconstructanimalmodels)：是指利用健康动物生物学特征来提供疾病模型。培育性动物模型(breedinganimalmodels)：是指通过遗传育种手段将基因突变异常表现保留下来用作疾病模型。 关于实验动物模型的重要知识点！浙江承接实验动物模型外包公司
肝纤维化模型实验动物模型
1.诱导方法：1)成年雄性小鼠40%CCL4，皮下注射或灌胃5mL/kg。每三天/次，连续8周。成年雄性大鼠皮下注射60％CCl4（3ml/kg），每周2次，共9周。2)成年雄性大鼠1％二甲基亚硝胺DMN（10mg/kg），1次/d，2次/周，连续4周。3)成年雄性大鼠腹腔注射硫代乙酰胺（100mg/kg）隔日腹腔注射1次，连续13周。4)成年大鼠，灌胃给白酒7g/kg体重，每日晨1次，连续24周。
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实验动物模型的灌注取材方法：
小鼠灌注灌流
固定小鼠时我一般采用输液器的针头(4号半，这样肉眼可见就是肺部明显充气胀大变白，针头要从心轴方向进针，刺入心尖3~4毫米左右就可以了，开始灌流后剪破右心耳，约40毫升生理盐水，后再灌流约20毫升多聚甲醛，整个灌流固定的过程就完成了。
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大鼠灌注
按大鼠体重，用2%戊巴，比妥钠（0.25ml/100g）进行腹腔注射麻醉，开胸暴露心脏，向左心室内注射1%肝素钠0.2ml后经左心室行主动脉插管，血管钳固定后剪开右心耳，先以生理盐水150ml快速冲洗血管，然后用4%多聚甲醛的0.01mol/LPBS（4℃，PH7.40）250ml灌注固定，先快后慢，共需时间为50min，之后取材，置4%多聚甲醛固定液后固定，在4℃冰箱内保存。多聚甲醛进入大鼠体内，大鼠会出现四肢、尾的抽搐，**终以肝脏发白、内脏鼓起即灌注好。
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研究衰老的物理损伤实验动物模型。动物脑血流量老年期较成年期减少20%以上，脑部慢性缺血、缺氧使脑的正常功能受损，出现认知功能障碍等AD病理性改变。由此理论在实验研究中通过长久结扎双侧颈总动脉血管（2VO）建立的缺血性痴呆动物模型，表现出认知功能障碍明显，淀粉样蛋白前体升高、神经元和脑细胞死亡、tau蛋白过度磷酸化、氧化应激反应和产生慢性炎症等AD病理特征。该动物模型病程较长，在行为学表现上如认知功能障碍与AD比较一致，病理上也高度相似，但引起AD的外因在该动物模型中不能体现出来，另外，2VO动物模型手术操作具有一定难度，模型复制后动物存活率低且时间短，不适合给药周期长的实验研究。另外，还有长久性结扎单侧颈总动脉、去胸腺衰老模型和γ射线致衰老模型、控制性皮质撞击模型、液压脑损伤模型等，由于这些模型在造模方法上复杂、难度高、造模后动物容易死亡、且结果不理想，只在个别特殊目的实验中有所应用。小鼠实验动物模型都有哪些？浙江承接实验动物模型外包公司
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蛛网膜下腔出血系由脑底或脑表部位的血管破裂，血液破入蛛网膜下腔引起。颅内动脉瘤，脑动、静脉畸形，血压高动脉硬化等为常见病因。蛛网膜下腔出血后可引起脑血管痉挛。因此，蛛网膜下腔出血和迟发性脑血管痉挛的模型有许多共同之处，造模时可同时作为参考。
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复制方法 ：健康大鼠，雌雄不拘，体重为250～350g。将钓鱼线剪成长约50mm，并在18mm处作标记，酒精消毒后置于无菌生理盐水中备用。麻醉后仰卧固定，剃除颈部毛发，手术区域皮肤消毒。颈正中切口，分离右侧颈总动脉、颈外动脉、颈内动脉，结扎、切断颈外动脉分支及颈总动脉分叉处小动脉，并游离颈外动脉主干，沿着颈内动脉暴露翼腭动脉，在颈外动脉残端放一丝线，使其呈一松结。在翼腭动脉起始部置一微动脉夹，同时夹闭颈总动脉及颈内动脉主干近端。在颈外动脉残端剪一小口，将制备好的栓线插入。此时将颈外动脉残端处丝线的松结拉紧，除去颈内动脉的动脉夹，继续将丝线沿着颈内动脉插入，直至感到有阻力，这时稍用力再插入1.0～1.5mm后有落空感即可抽出丝线并除去微动脉夹。栓线的直径及插入的深度根据动物的体重而定。 浙江承接实验动物模型外包公司
