如何提高细胞转染实验效率:优化细胞生长状态密切观察您的细胞;确保它们状态良好。在开始转染细胞之前,先制定一个适当的种板方案,使细胞密度从转染开始到结束都保持较佳状态。增加成功几率—细胞是转染过程中的一个关键元素,它可以是影响结果的一致性和质量的较重要的变量。此外,还常用促有丝分裂刺激物(如,细菌转化,生长因子,条件培养基,以及滋养细胞)来活化原代培养细胞。贴壁细胞相比较悬浮细胞—在转染效率方面贴壁细胞和悬浮细胞之间的差异明显。天生趋于悬浮的细胞(如HL 60,Jurkat)非常难以转染。相反,天生为贴壁的细胞(如HEK,CHO)则可适应悬浮生长的条件。瞬时转染与稳定转染常规转染技术根据基因表达时间的长短可分为两大类。芜湖正规细胞高效转染试剂哪里买
细胞转染为什么不能加血清:传统的转染试剂一般会增加细胞的通透性,这样会把血清中的成分带入细胞,造成细胞毒性。阳离子脂质体,转染的过程是带正电的脂质体与核酸带负电的磷酸基团形成复合物被细胞内吞。血清中含有大量的蛋白质,在转染过程中,带负电的蛋白质可能干扰阳离子脂质体对核酸的吸附,影响转染效率。同时,也会将血清中的蛋白带入细胞,引发细胞毒性,故不能有血清转染。这些转染试剂要求在转染前换无血清培养基,转染后 4-6h在更换成有血清培养基,这其实是为了减轻转染造成的细胞毒性和转染效率的降低。济南细胞高效转染试剂厂家现货大部分外源DNA会被核酸酶降解或随细胞分裂而稀释。
细胞转染的常用方法:磷酸钙共沉淀原理:该法可用于瞬时或稳定转染。然而因其对pH、温度和缓冲液盐浓度的微小变化十分敏感,所得结果容易出现差异,且对许多类型的细胞培养物(尤其是原代细胞)具有细胞毒性,转染效率较差。实验步骤:将核酸与氯化钙在磷酸盐缓冲液中混合,同时控制好pH、温度等条件 → 室温孵育,生成浓缩DNA的极小不溶性颗粒沉淀 → 将颗粒型沉淀分散到细胞中,促进DNA粘附在细胞表面 → 共沉淀通过内吞作用进入胞浆 → 分析细胞瞬时基因表达或者选择稳定性传染。
细胞转染方法:1.脂质体转染法阳离子脂质体表面带正电荷,能与核酸的磷酸根通过静电作用,将DNA分子包裹入内,形成DNA脂复合物,也能被表面带负电的细胞膜吸附,再通过融合或细胞内吞进入细胞。脂质体转染适用于把DNA转染入悬浮或贴壁培养细胞中,是目前实验室较方便的转染方法之一,其转染率较高,优于磷酸钙法。由于脂质体对细胞有一定的毒性,所以转染时间一般不超过24小时。常用细胞类型:cos-7 、BHK、NIH3T3 、Hela等2.电穿孔转染法电流能够可逆地击穿细胞膜形成瞬时的水通路或膜上小孔促使DNA分子进入胞内,这种方法就是电穿孔。当遇到某些脂质体转染效率很低或几乎无法转入时建议用电穿孔法转染。一般情况下,高电场强度会杀死50%-70% 的细胞。现在针对细胞死亡开发出了一种电转保护剂,可以较大的降低细胞的死亡率,同时提高电穿孔转染效率。一类是瞬时转染,一类是稳定转染(很长转染)。
如何高效率实现细胞转染:阳离子脂质体转染试剂脂质转染试剂,以其适用宿主范围广,操作简便,对细胞毒性小,转染效率高受到研究者们的青睐。脂质体(liposome)是一种人工膜,在水相中形成具有双分子层结构的球形封闭囊泡。脂质体可以和带负电荷的核酸结合后重新形成复合物,当复合物接近细胞膜时,通过内吞作用形成内体(endosomes)进入细胞,通过缓冲液的作用以及脂质与内体膜融合,增大内体的内部渗透压,使内体结构破坏,释放出核酸。随后DNA复合物被释放进入细胞核内。对于普通细胞系,一般的瞬时转染方法多采用脂质体法。利用脂质体转染法较重要的就是防止其毒性,因此脂质体与质粒的比例,细胞密度以及转染的时间长短和培养基中血清的含量都是影响转染效率的重要因素,通过实验优化合适的转染条件对于转染效率的提高很重要。由于脂质体对细胞有一定的毒性,所以转染时间一般不超过24小时。济南细胞高效转染试剂销售厂家
在瞬时转染质粒中往往都含有一个报告基。芜湖正规细胞高效转染试剂哪里买
细胞转染效率影响因素:1.细胞密度一般来说,当细胞密度达到60%~80%时进行转染可以取得较高的转染效率,过低或过高都会影响转染效果。2.细胞生长状态这点非常关键,很多时候传代次数太少或者太多都将导致细胞对转染试剂敏感度的改变。因此,为了提高转染效率以及转染稳定性、降低细胞毒性,应尽量使用适度传代的细胞系,并在不同次实验时保持细胞传代次数的一致性。3.细胞种类不同细胞种类的细胞在做转染时所需要的转染体系是不同的,不能一种体系用在所有类型细胞的转染实验。芜湖正规细胞高效转染试剂哪里买
细胞转染效率低下的几个大坑:1.试剂过期有时候转染效率低下,还要考虑会不会存在试剂过期的情况。毛博当年做转染整整半年,百思不得其解。较后发现,原来是Lipofectamine2000过期了。换了之后,立马成功。根据我的经验,尽量使用开封半年内的,因为过了半年后,就算没有过失效期,但是细胞毒性较大增加,而转染效率却较大下降。千万不要为了省钱,影响实验进度哈。2.未加血清转染后未及时加入血清,会导致细胞大量死亡。一般要在转染后的4-6小时换液且换为有血清的培养基。根据毛博的经验,其实也可以在原来的无血清培养基里面滴加血清。这个时候,较好不要换液,不要打扰细胞,让它安安静静地休息。但是也不能过早加入...