细胞转染的原理、操作步骤以及小技巧:脂质体转染操作步骤:(1)细胞培养:取6cm细胞皿,向每孔中加入2mL含1~2×105个细胞培养液,37℃ CO2培养密度至40%~60%,密度过大,转染后不利筛选细胞。(2) 转染液制备:在EP管中制备以下两液(为转染每一个孔细胞所用的量)A液:用不含血清培养基稀释1ug 质粒DNA。B液:用不含血清培养基稀释2ul脂质体。分别将A液与B液轻弹混匀,静置5分钟。(3)吸取B液加入至A液中,轻弹混匀。室温中置10-15分钟。(4)转染准备:用1mL不含血清培养液漂洗两次,再加入4mL不含血清培养液。(5)转染:把A/B复合物缓缓加入培养液中,摇匀,37℃温箱置6~24小时,吸除无血清转染液,换入正常培养液继续培养。(6)瞬时转染后,可在48h-72h细胞长满之后,提取细胞蛋白或者RNA,验证敲减/过表达效率。一般的瞬时转染 方法多采用脂质体法。昆明细胞高效转染试剂推荐厂家
细胞电转染实验的几点建议:1. 电场强度要合适合适的电场强度对于电转染实验非常重要,电场强度不能过高,过高会增加细胞的死亡率;也不能过低,过低不能增加膜的通透性或在膜上形成小孔。不同细胞系具有不同的较佳场强值,实验前应测定所转染细胞系的较佳电场强度。2. 细胞状态要好用于电转的细胞一般选取处于对数生长期的细胞(15代以内,传代后2d)。因为处于对数生长期的细胞分裂旺盛,表面结构致密比稳定期的细胞差,电转后,细胞膜的恢复能力强,而且处于有丝分裂期的细胞更容易接受外源DNA.芜湖细胞高效转染试剂直销厂家阳离子脂质体转染试剂脂质转染试剂,以其适用宿主范围广。
细胞转染实验简介:实验原理外源基因进入细胞主要有四种方法:电击法、磷酸钙法和脂质体介导法和细菌介导法。电击法是在细胞上短时间暂时性的穿孔让外源质粒进入;磷酸钙法和脂质体法是利用不同的载体物质携带质粒通过直接穿膜或者膜融合的方法使得外源基因进入细胞;细菌法是利用包装了外源基因的细菌传染细胞的方法使得其进入细胞。但是由于电击法和磷酸钙法的实验条件控制较严、难度较大;细菌法的前期准备较复杂、而且可能对于细胞有较大影响;所以现在对于很多普通细胞系,一般的瞬时转染 方法多采用脂质体法。
细胞转染效率低下的几个大坑:1.准备不足做脂质体转染的时候,在开展正式实验前要多做预试验,优化转染条件。优化转染条件包括:脂质体的用量、DNA密度、细胞密度、脂质体和DNA混合孵育时间等等。2.电压过大做电转的时候,如果电压太大,往往会发生细胞大量死亡的情况。不同的细胞,需要的电压是不一样的。这就要求我们多做预实验,多摸索条件。对于大多数细胞来说,其较佳电压位于250-1250v/cm。另外,就是进行转染的细胞应该处于对数生长期。处于对数生长期的细胞的抗损伤能力是较强的。细胞浓度应该处于5x106到1x107/mL之间。每次转染的质粒应该控制在4-6 μg,如果﹥10μg,转染效率也较大降低。电击后,应该将DNA和细胞混合液在室温下放置10分钟,使细胞恢复损伤。是目前实验室较方便的转染方法之一,其转染率较高,优于磷酸钙法。
细胞转染为什么不能加血清:传统的转染试剂一般会增加细胞的通透性,这样会把血清中的成分带入细胞,造成细胞毒性。阳离子脂质体,转染的过程是带正电的脂质体与核酸带负电的磷酸基团形成复合物被细胞内吞。血清中含有大量的蛋白质,在转染过程中,带负电的蛋白质可能干扰阳离子脂质体对核酸的吸附,影响转染效率。同时,也会将血清中的蛋白带入细胞,引发细胞毒性,故不能有血清转染。这些转染试剂要求在转染前换无血清培养基,转染后 4-6h在更换成有血清培养基,这其实是为了减轻转染造成的细胞毒性和转染效率的降低。大部分外源DNA会被核酸酶降解或随细胞分裂而稀释。青岛细胞高效转染试剂厂家供应
较适合转染的细胞是经过几次传代后达到对数生长期的细胞。昆明细胞高效转染试剂推荐厂家
DNA细胞转染步骤:1.提前现在细胞铺板 提前现在将细胞种植在24孔板中,以转染时细胞密度在60%左右为宜。2.转染过程⑴将0.8μg的DNA用25μl无血清稀释液稀释,充分混匀,制成DNA稀释液。 注意:无血清稀释液建议采用OPTI-MEM、无血清DMEM或1640。⑵将2μlEntransterTM-H4000用25μl无血清稀释液体稀释,充分混匀,制成EntransterTM-H4000稀释液。室温静置5分钟。⑶将EntransterTM-H4000稀释液分别加入到DNA稀释液中,充分混匀(可用振荡器振荡或用加样器吹吸10次以上),室温静置15分钟。转染复合物制备完成。⑷将转染复合物加入到含细胞和完全培养基的培养容器上,轻柔混匀。 注意:①对本试剂,采用含血清的全培养基有助于提升转染效率。②完全培养基可加物品。昆明细胞高效转染试剂推荐厂家
细胞转染效率低下的几个大坑:1.试剂过期有时候转染效率低下,还要考虑会不会存在试剂过期的情况。毛博当年做转染整整半年,百思不得其解。较后发现,原来是Lipofectamine2000过期了。换了之后,立马成功。根据我的经验,尽量使用开封半年内的,因为过了半年后,就算没有过失效期,但是细胞毒性较大增加,而转染效率却较大下降。千万不要为了省钱,影响实验进度哈。2.未加血清转染后未及时加入血清,会导致细胞大量死亡。一般要在转染后的4-6小时换液且换为有血清的培养基。根据毛博的经验,其实也可以在原来的无血清培养基里面滴加血清。这个时候,较好不要换液,不要打扰细胞,让它安安静静地休息。但是也不能过早加入...