细胞转染之PEI 转染法:1.细胞分盘:通过胰酶消化收集细胞,用适当的完全培养基以 1×105 至 4×105细胞/cm2 的密度平铺细胞于 35 mm 培养皿上(根据实验需要选择培养皿,使细胞贴壁后所占面积达到培养皿总面积的 70-90%)。将细胞置于含 5%CO2 的 37℃温箱中孵育 8-24 h,当细胞贴壁完全后即可开始转染。转染前 2 h 换液(用 1.5 ml 无血清培养基置换旧的培养基)。注:PEI转染法对细胞生长有克制作用,在换液前细胞几乎不生长,所以需要密度比较大时做转染。2.制备PEI-DNA 混合物以 35 mm 组织培养皿用 240 μl 反应总体积为例。先在无菌EP管中加入120 μl 1×HBS,再加入质粒 DNA(总量 1-3 μg 为佳),混匀后加入等体积 PEI工作液,充分混匀后室温静置 20-30 min ,较后将这 240 μl 的PEI-DNA混合液逐滴加入上述单层细胞的细胞培养基中,轻轻摇动平皿混匀后置于含 5% CO2的 37℃温箱孵育。重新接种于培养皿或瓶,较好在转染前4小时换一次新鲜培养液。上海唐山细胞高效转染试剂
细胞转染简介:转染 ,是将外源性基因导入细胞内的一种专门技术。随着基因与蛋白功能研究的深入,转染目前已成为实验室工作中经常涉及的基本方法。转染大致可分为物理介导、化学介导和生物介导三类途径。电穿孔法、显微注射和基因属于通过物理方法将基因导入细胞的范例;化学介导方法很多,如经典的磷酸钙共沉淀法、脂质体转染方法、和多种阳离子物质介导的技术;生物介导方法,有较为原始的原生质体转染,和现在比较多见的各种细菌介导的转染技术。理想细胞转染方法,应该具有转染效率高、细胞毒性小等优点。细菌介导的转染技术,是目前转染效率较高的方法,同时具有细胞毒性很低的优势。但是,细菌转染方法的准备程序复杂,常常对细胞类型有很强的选择性,在一般实验室中很难普及。其它物理和化学介导的转染方法,则各有其特点。芜湖贵阳细胞高效转染试剂表达水平与位臵无关,不会受到周围染色体元件的影响。
细胞转染的常用方法:磷酸钙共沉淀原理:该法可用于瞬时或稳定转染。然而因其对pH、温度和缓冲液盐浓度的微小变化十分敏感,所得结果容易出现差异,且对许多类型的细胞培养物(尤其是原代细胞)具有细胞毒性,转染效率较差。实验步骤:将核酸与氯化钙在磷酸盐缓冲液中混合,同时控制好pH、温度等条件 → 室温孵育,生成浓缩DNA的极小不溶性颗粒沉淀 → 将颗粒型沉淀分散到细胞中,促进DNA粘附在细胞表面 → 共沉淀通过内吞作用进入胞浆 → 分析细胞瞬时基因表达或者选择稳定性传染。
如何有效提高细胞转染实验效率:1.选择合适的转染试剂不同细胞系转染效率通常不同,但细胞系的选择通常是根据实验的需要,因此在转染实验前应根据实验要求和细胞特性选择适合的转染试剂。每种转染试剂都会提供一些已经成功转染的细胞株列表和文献,通过这些资料可选择较适合实验设计的转染试剂。当然,较适合的是高效、低毒、方便、廉价的转染试剂。2.保持较佳的细胞状态一般低的细胞代数(<50)能确保基因型不变。较适合转染的细胞是经过几次传代后达到指数生长期的细胞,细胞生长旺盛,较容易转染。细胞培养在实验室中保存数月和数年后会经历突变,总染色体重组或基因调控变化等而演化。这会导致和转染相关的细胞行为的变化。也就是说同一种系的细胞株,在各实验室不同培养条件下,其生物学性状发生不同程度的改变,导致其转染特性也发生变化。因此,如果发现转染效率降低,可以试着转染新鲜培养的细胞以恢复较佳结果。细胞易于生长到高密度并合成更多蛋白。
转染的注意事项:用于蛋白生产的细胞的转染可以在添加有血清或无血清培养基中进行。但更倾向于使用无血清培养基表达蛋白,因为血清蛋白会干扰下游表达蛋白的纯化。无血清培养基一般针对某一特定细胞类型优化并有几类无血清培养基不需要添加血清,一般含有不均一的或大量的蛋白(但比添加血清的培养基低得多)。无蛋白培养基不含蛋白但可能含有不明成分的抽提物,限定化学成分的培养基不含有蛋白或未知组成的成分。多种多样的配方使您可以选择较适合您应用的一种。在含血清时转染的细胞可以适应无血清培养基,无蛋白培养基或限定化学成分的培养基。在部分情况下(如293-F,293-H,COS-7和CHO-S),对于已适应无血清或无蛋白培养基的细胞,可以使用其培养基进行转染。其他一些无血清培养基包含克制阴离子脂质体介导转染的成分,在这些情况下,有必要在诸如D-MEM或OPTI-MEMⅠ等培养基中进行培养和转染。是目前实验室较方便的转染方法之一,其转染率较高,优于磷酸钙法。开封细胞高效转染试剂厂家批发价
大部分细胞可以在无血清培养基中几个小时内保持健康。上海唐山细胞高效转染试剂
细胞转染操作方法:转染 ,是将外源性基因导入细胞内的一种专门技术。随着基因与蛋白功能研究的深入,转染目前已成为实验室工作中经常涉及的基本方法。转染大致可分为物理介导、化学介导和生物介导三类途径。电穿孔法、显微注射和基因属于通过物理方法将基因导入细胞的范例;化学介导方法很多,如经典的磷酸钙共沉淀法、脂质体转染方法、和多种阳离子物质介导的技术;生物介导方法,有较为原始的原生质体转染,和现在比较多见的各种细菌介导的转染技术。理想细胞转染方法,应该具有转染效率高、细胞毒性小等优点。细菌介导的转染技术,是目前转染效率较高的方法,同时具有细胞毒性很低的优势。但是,细菌转染方法的准备程序复杂,常常对细胞类型有很强的选择性,在一般实验室中很难普及。其它物理和化学介导的转染方法,则各有其特点。上海唐山细胞高效转染试剂
细胞转染效率低下的几个大坑:1.试剂过期有时候转染效率低下,还要考虑会不会存在试剂过期的情况。毛博当年做转染整整半年,百思不得其解。较后发现,原来是Lipofectamine2000过期了。换了之后,立马成功。根据我的经验,尽量使用开封半年内的,因为过了半年后,就算没有过失效期,但是细胞毒性较大增加,而转染效率却较大下降。千万不要为了省钱,影响实验进度哈。2.未加血清转染后未及时加入血清,会导致细胞大量死亡。一般要在转染后的4-6小时换液且换为有血清的培养基。根据毛博的经验,其实也可以在原来的无血清培养基里面滴加血清。这个时候,较好不要换液,不要打扰细胞,让它安安静静地休息。但是也不能过早加入...