由于这些核酸被囊膜包裹而被保护,稳定性高,不易降解,是一种用于一些病症诊断和预后监测的非常理想的新型生物标记物一些疾病的早期诊断、用药监控、预后判断。近年来,随着人们对外泌体的研究和认识加深,外泌体检测作为一种新型的液体活检热点技术已被许多临床科研机构普遍地应用于一些病症和疾病的无创诊断、治病和监测;如何高效地提取外泌体是实现这项新兴液体活检技术临床常规化应用的关键。外泌体(Exosome)是从体液(尿液、血液、唾液、腹水、胸腹水等)和细胞液中快速提取的,其是活细胞分泌到胞外的囊泡样小体,含有多种蛋白和核酸分子(DNA、RNA、以及miRNA),在体内细胞间物质和信号转导中起到重要作用。外泌体提取:具有高粘度的生物样品。太原外泌体提取试剂哪家好
外泌体表面有其特异性标记物(如CD63、CD9蛋白),用包被抗标记物抗体的磁珠与外泌体囊泡孵育后结合,即可将外泌体吸附并分离出来。磁珠法具有特异性高、操作简便、不影响外泌体形态完整等优点,但是效率低,外泌体生物活性易受pH和盐浓度影响,不利于下游实验,难以普遍普及。聚乙二醇(PEG)可与疏水性蛋白和脂质分子结合共沉淀,早先应用于从血清等样本中收集菌类,现在也被用来沉淀外泌体,其原理可能与竞争性结合游离水分子有关。利用PEG沉淀外泌体存在不少问题:比如纯度和回收率低,杂蛋白较多(假阳性),颗粒大小不均一,产生难以去除的聚合物,机械力或者吐温-20等化学添加物将会破坏外泌体等,因此发表文章时易受质疑。如纯度和回收率低,杂蛋白较多(假阳性),颗粒大小不均一,产生难以去除的聚合物。上海外泌体提取试剂进货价外泌体提取:高速离心以消除更大的囊泡。
外泌体的提取、分离方法:梯度密度离心法。研究发现,外泌体的密度在1.1~1.19kg·L-1之间,因此,可以采用密度梯度离心法来分离外泌体。该方法是将超速离心结合蔗糖密度梯度或蔗糖垫结合,原理是先除去非囊泡物质,再通过梯度密度浓缩提取外泌体,该方法可以得到相对较为纯净的外泌体。传统的梯度密度方法通常需要离心16h,但是2012年,研究者[15]使用了62~90h才分离出某些确切囊泡,因此,该方法可能不足以沉淀所有的外泌体。如果离心时间不充足,污染物质可能和外泌体保持在相同的密度层,特别是这个密度范围又比较宽。
Exosome,中文名外泌体,是一种能被大多数细胞分泌的微小膜泡,具有脂质双层膜结构,直径大约40-100nm。尽管外泌体较初在1983年就被发现,但人们一直认为它只是一种细胞的废弃物。然而较近几年,人们发现这种微小膜泡中含有细胞特异的蛋白、脂质和核酸,能作为信号分子传递给其他细胞从而改变其他细胞的功能。这些发现点燃了人们对细胞分泌膜泡的兴趣。较近的研究发现外泌体在很多生理病理上起着重要的作用,如免疫中抗原呈递、一些病症的生长与迁移、组织损伤的修复等。不同细胞分泌的外泌体具有不用的组成成分和功能,可作为疾病诊断的生物标志物。外泌体具有脂质双层膜结构,能很好的保护其包被的物质,且能靶向特定细胞或组织,因此是一种很好靶向给药系统(targeteddeliverysystem)。重复离心操作还有可能对囊泡造成损害,从而降低其质量。
外泌体的提取方法:1、磁珠免疫法。外泌体表面有其特异性标记物(如CD63、CD9蛋白),用包被抗标记物抗体的磁珠与外泌体囊泡孵育后结合,即可将外泌体吸附并分离出来。磁珠法具有特异性高、操作简便、不影响外泌体形态完整等优点,但是效率低,外泌体生物活性易受pH和盐浓度影响,不利于下游实验,难以普遍普及。2、多聚物沉淀法。聚乙二醇(PEG)为常用的多聚物,可与疏水性蛋白和脂质分子结合共沉淀,早先应用于从血清等样本中收集病毒,现在也被用来沉淀外泌体,其原理可能与竞争性结合游离水分子有关。利用PEG沉淀外泌体存在不少问题:比如纯度和回收率低,杂蛋白较多(假阳性),颗粒大小不均一,产生难以去除的聚合物,机械力或者吐温-20等化学添加物将会破坏外泌体等。外泌体提取:差速离心。差速离心仍然是较常见的外泌体分离技术之一。长沙正规外泌体提取试剂服务电话
外泌体的提取、分离方法:聚合物沉淀法。太原外泌体提取试剂哪家好
外泌体(exosomes)是活细胞经过"内吞-融合-外排"等一系列调控过程而形成的膜性囊泡,来源于晚期核内体(也称为多囊泡体),直径约为30-150nm,密度在1.13-1.21g/ml,天然存在于血液、唾液、尿液及母乳等体液中,同时外泌体也存在于组织和细胞间隙中。人体中几乎所有类型的细胞均能产生外泌体,人体中大约有1014个外泌体,大约平均每个细胞产生1000-10000个。外泌体中含有核酸(DNA、miRNA、lncRNA、mRNA、tRF等)、蛋白和脂类,在细胞间物质和信息转导中发挥重要作用,研究表明其在干细胞、免疫调控、瘤转移、血管生成以及生物标志物等领域都发挥着不可替代的作用。太原外泌体提取试剂哪家好
密度梯度离心法该方法由于比较繁琐,用的较少。原理是:像所有的脂质小囊泡一样,外泌体可以悬浮于特定密度梯度的蔗糖中,其密度范围1.13g/ml-1.21g/ml,将要分离外泌体的样本液体置于梯度蔗糖介质上,随后通过离心将外泌体分离。此法获得的外泌体纯度较高,但步骤繁琐,耗时,对离心时间极为敏感。具体步骤是:收集培养2d的上清液。将培养上清液先以1500r/min离心5min除去细胞及碎片,再依次以1000×g离心10min取上清,10000×g离心30min取上清,然后用100ku超滤离心管(Millipore)浓缩至15mL,超离法是常用的外泌体纯化手段,采用低速离心、高速离心交替进行,可分离...