细胞转染实验的方法有哪些:1..电穿孔法。通过短暂的高电场电脉冲处理细胞,沿细胞膜的电压差异会导致细胞膜的暂时穿孔。DNA被认为是穿过孔扩散到细胞内的。电脉冲和场强的优化对于成功的转染非常重要,因为过高的场强和过长的电脉冲时间会不可逆地伤害细胞膜而裂解细胞。理论上说电穿孔法可用于各种细胞,且不需要另外采购特殊试剂,但需要昂贵的电转仪。此法每次转染需要更多的细胞和DNA,因为细胞的死亡率高。每种细胞电转的条件都需要进行多次优化。2.细菌介导的传染。传染需要将目的基因克隆到特定的细菌体系中,经过包装细胞的包装得到改造后的细菌,再进行传染。优点是转染效率特别高,尤其是难以转染的原代细胞、细胞。缺点是构建细菌周期长,环节多,易出错,费用也高必须通过对药物的抗性筛选进行扩增或通过表型变化进行鉴定。石家庄正规细胞高效转染试剂生产厂家
转染的注意事项:细胞铺板密度用于转染的较佳细胞密度根据不同的细胞类型或应用而异。一般转染时,贴壁细胞密度为70%-90%,悬浮细胞密度为2×106-4×106细胞/ml时效果较好。确保转染时细胞没有长满或处于静止期。因为转染效率对细胞密度很敏感,所以在不同实验间保持一个基本的传代步骤很重要。铺板细胞数目的增加可以增加转染活性和细胞产量。在三种不同密度进行细胞铺板的比较表明铺板密度较高的,CAT活性也较高。得到较高活性所需的LIPOFECTAMINE试剂的量也相应增加了。这些结果说明,对于转染相同量的DNA所需的较佳阳离子脂质体试剂的量会因细胞密度而异。南京正规细胞高效转染试剂厂家现货细胞铺板密度用于转染的较佳细胞密度根据不同的细胞类型或应用而异。
细胞转染的常用方法:人工脂质体法原理:带正电的脂质体与核酸带负电的磷酸基团形成复合物,进而可被细胞内吞稳定转染/瞬时性转染。这种方法几乎适用于所有细胞,转染效率高、重复型好,但转染时需要去除血清,转染效果随细胞类型变化大。实验步骤:在单独试管中分别稀释核酸及转染试剂→脂质体与核酸的磷酸骨架结合,形成复合物→脂质体上的正电荷有助于复合物与细胞膜结合→复合物通过内吞作用进入胞浆→分析细胞瞬时基因表达或沉默情况。
细胞转染的原理、操作步骤以及小技巧:一、脂质体(Liposome)转染方法原理脂质体作为体内和体外输送载体的工具,已经研究的十分普遍,中性脂质体是利用脂质膜包裹DNA,借助脂质膜将DNA导入细胞膜内。带正电的阳离子脂质体,DNA并没有预先包埋在脂质体中,而是带负电的DNA自动结合到带正电的脂质体上,形成DNA-阳离子脂质体复合物,从而吸附到带负电的细胞膜表面,经过内吞被导入细胞。优点:与其它方法相比,有较高的效率和较好的重复性,它适用于把DNA转染入悬浮或贴壁培养细胞中,是目前条件下较方便的转染方法之一对大多数细胞而言,均需要在转染当天或前现在铺板,第二天上午进行转染。
稳定转染细胞系的筛选:生长的细胞比不分裂的细胞更快的受到GENETICIN物品的影响。转染后,在开始筛选前等待48-72小时,使细胞表达足够量的抗性酶,保证在开始筛选时可以自我保护。转染后48-72小时倒掉培养基,加入含有GENETICIN物品的培养基,物品的浓度根据剂量反应曲线确定,足够杀死未转染细胞。因为许多因子影响到筛选所需的GENETICIN物品的较佳浓度,包括细胞类型,培养基和血清浓度等,所以有必要对每种细胞作一个剂量反应曲线,确定较佳浓度。筛选较多可能需要一周时间,因为在致死剂量的GENETICIN物品存在条件下,细胞会分裂1-2次。在次培养细胞时使用较低剂量的物品,一般是筛选剂量的一半。筛选后的细胞一般是离散的克隆,根据实验目的不同,可以分别纯化(克隆),收集进行大量培养或染色并进行抗性克隆的计数。再通过融合或细胞内吞进入细胞。郑州细胞高效转染试剂进货价
转染试剂与细胞不匹配细胞转染较适合的不是原代细胞。石家庄正规细胞高效转染试剂生产厂家
细胞转染的注意事项:细胞状态这点非常重要,不要急于求成,一定要让细胞处于较佳的生长状态再做。有文献说传代不要超过17代。细胞复苏后的3代左右时细胞状态较好,不要用传了很多代的细胞去做,细胞的形态都会发生变化。大多数已建立的细胞系都是非整倍体,原代培养包括了表达不同基因组合的细胞的混合物。细胞培养在实验室中保存数月和数年后会经历突变,总染色体重组或基因调控变化等而演化。这会导致和转染相关的细胞行为的变化。如果随时间发现这种变化,融化一管新鲜的细胞可能会恢复原先的转染活性。因此,如果观察到转染效率降低,可以试着转染新鲜培养的细胞以恢复较佳结果。或者,几种来源于经筛选,转染效率较高细胞亚系的细胞系现在有售。石家庄正规细胞高效转染试剂生产厂家
细胞转染效率低下的几个大坑:1.试剂过期有时候转染效率低下,还要考虑会不会存在试剂过期的情况。毛博当年做转染整整半年,百思不得其解。较后发现,原来是Lipofectamine2000过期了。换了之后,立马成功。根据我的经验,尽量使用开封半年内的,因为过了半年后,就算没有过失效期,但是细胞毒性较大增加,而转染效率却较大下降。千万不要为了省钱,影响实验进度哈。2.未加血清转染后未及时加入血清,会导致细胞大量死亡。一般要在转染后的4-6小时换液且换为有血清的培养基。根据毛博的经验,其实也可以在原来的无血清培养基里面滴加血清。这个时候,较好不要换液,不要打扰细胞,让它安安静静地休息。但是也不能过早加入...