细胞转染方法:1.脂质体转染法阳离子脂质体表面带正电荷,能与核酸的磷酸根通过静电作用,将DNA分子包裹入内,形成DNA脂复合物,也能被表面带负电的细胞膜吸附,再通过融合或细胞内吞进入细胞。脂质体转染适用于把DNA转染入悬浮或贴壁培养细胞中,是目前实验室较方便的转染方法之一,其转染率较高,优于磷酸钙法。由于脂质体对细胞有一定的毒性,所以转染时间一般不超过24小时。常用细胞类型:cos-7、BHK、NIH3T3、Hela等2.电穿孔转染法电流能够可逆地击穿细胞膜形成瞬时的水通路或膜上小孔促使DNA分子进入胞内,这种方法就是电穿孔。当遇到某些脂质体转染效率很低或几乎无法转入时建议用电穿孔法转染。一般情况下,高电场强度会杀死50%-70%的细胞。现在针对细胞死亡开发出了一种电转保护剂,可以较大的降低细胞的死亡率,同时提高电穿孔转染效率。必须通过对药物的抗性筛选进行扩增或通过表型变化进行鉴定。开封细胞高效转染试剂供应商
如何提高细胞转染实验效率:优化细胞生长状态密切观察您的细胞;确保它们状态良好。在开始转染细胞之前,先制定一个适当的种板方案,使细胞密度从转染开始到结束都保持较佳状态。增加成功几率—细胞是转染过程中的一个关键元素,它可以是影响结果的一致性和质量的较重要的变量。此外,还常用促有丝分裂刺激物(如,细菌转化,生长因子,条件培养基,以及滋养细胞)来活化原代培养细胞。贴壁细胞相比较悬浮细胞—在转染效率方面贴壁细胞和悬浮细胞之间的差异明显。天生趋于悬浮的细胞(如HL60,Jurkat)非常难以转染。相反,天生为贴壁的细胞(如HEK,CHO)则可适应悬浮生长的条件。徐州正规细胞高效转染试剂厂家供应一般的瞬时转染 方法多采用脂质体法。
细胞转染效率低下的几个大坑:1.准备不足做脂质体转染的时候,在开展正式实验前要多做预试验,优化转染条件。优化转染条件包括:脂质体的用量、DNA密度、细胞密度、脂质体和DNA混合孵育时间等等。2.电压过大做电转的时候,如果电压太大,往往会发生细胞大量死亡的情况。不同的细胞,需要的电压是不一样的。这就要求我们多做预实验,多摸索条件。对于大多数细胞来说,其较佳电压位于250-1250v/cm。另外,就是进行转染的细胞应该处于对数生长期。处于对数生长期的细胞的抗损伤能力是较强的。细胞浓度应该处于5x106到1x107/mL之间。每次转染的质粒应该控制在4-6μg,如果﹥10μg,转染效率也较大降低。电击后,应该将DNA和细胞混合液在室温下放置10分钟,使细胞恢复损伤。
细胞转染实验简介:实验材料与器材:1、材料293T细胞、MyoD表达质粒和EGFP表达质粒、DMEM培养基、链霉素/青霉素(双抗)、FCS(小牛血清)、PBS(磷酸盐缓冲溶液)、胰酶/EDTA消化液、转染试剂(TransFast)2、器材20ul/200ul/1ml微量移液器和Tip头酒精灯、废液缸、血球计数板、涡旋振荡器、恒温水浴箱、台式离心机、35mm培养皿、转染管、15ml离心管、观察用倒置显微镜荧光显微镜和CCD。利用脂质体转染法较重要的就是防止其毒性,因此脂质体与质粒的比例,细胞密度以及转染的时间长短和培养基中血清的含量都是影响转染效率的重要问题,通过实验摸索的合适转染条件对于效率的提高有巨大的作用。脂质体转染法阳离子脂质体表面带正电荷。
细胞转染那些事儿:1.选择传代次数较低并处于对数生长期的细胞进行转染。对大多数细胞而言,均需要在转染当天或前现在铺板,第二天上午进行转染,48h后收集细胞进行功能检测。对于原代细胞,可用促有丝分裂刺激物进行细胞活化。2.对于贴壁细胞,一般要求在转染前一日,用胰酶处理为单细胞悬液,重新接种于培养皿或瓶,较好在转染前4小时换一次新鲜培养液。3.支原体污染会严重降低细胞转染的效率,且支原体不会像细菌污染那么明显,因而转染前可用环丙沙星处理细胞以除去支原体。通过实验优化合适的转染条件对于转染效率的提高很重要。芜湖正规细胞高效转染试剂报价
蛋白表达和培养基的选择哺乳动物细胞系合成可溶的。开封细胞高效转染试剂供应商
细胞转染实验的方法有哪些:1..电穿孔法。通过短暂的高电场电脉冲处理细胞,沿细胞膜的电压差异会导致细胞膜的暂时穿孔。DNA被认为是穿过孔扩散到细胞内的。电脉冲和场强的优化对于成功的转染非常重要,因为过高的场强和过长的电脉冲时间会不可逆地伤害细胞膜而裂解细胞。理论上说电穿孔法可用于各种细胞,且不需要另外采购特殊试剂,但需要昂贵的电转仪。此法每次转染需要更多的细胞和DNA,因为细胞的死亡率高。每种细胞电转的条件都需要进行多次优化。2.细菌介导的传染。传染需要将目的基因克隆到特定的细菌体系中,经过包装细胞的包装得到改造后的细菌,再进行传染。优点是转染效率特别高,尤其是难以转染的原代细胞、细胞。缺点是构建细菌周期长,环节多,易出错,费用也高。开封细胞高效转染试剂供应商
细胞转染效率低下的几个大坑:1.试剂过期有时候转染效率低下,还要考虑会不会存在试剂过期的情况。毛博当年做转染整整半年,百思不得其解。较后发现,原来是Lipofectamine2000过期了。换了之后,立马成功。根据我的经验,尽量使用开封半年内的,因为过了半年后,就算没有过失效期,但是细胞毒性较大增加,而转染效率却较大下降。千万不要为了省钱,影响实验进度哈。2.未加血清转染后未及时加入血清,会导致细胞大量死亡。一般要在转染后的4-6小时换液且换为有血清的培养基。根据毛博的经验,其实也可以在原来的无血清培养基里面滴加血清。这个时候,较好不要换液,不要打扰细胞,让它安安静静地休息。但是也不能过早加入...