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糖原及粘液染色法注意事项：1、糖原的固定要及时，而且标本要新鲜。2、如用无水酒精作糖原的固定剂，有它的弊病，因无水酒精渗透较慢，而且容易产生极化，（极化是糖原颗粒趋向于细胞的一端）。故用Gendre氏固定液效果较佳，其配法如下：苦味酸饱和于95%酒精85ml40%甲醛10ml冰醋酸5ml3、各种试剂必须化学纯，亚硫酸钠须有浓厚气味，器皿必须洁净而干燥，染色缸亦是。4、如果Schiff氏试剂，在经过活性碳吸附漂白后不显无色，首先应考虑试剂中的偏重亚硫酸钠是否失效。如果偏重亚硫酸钠气味不浓，使用时可考虑适当的增加用量。其次考虑碱性品红本身，常常虽属同一生产厂家，但不同批号，其效果就可能不同，应特别引起注意~推荐用于骨和软骨的染色。上海口碑好的糖原染色试剂盒厂家批发价

糖原染色：方法固定液Carnoy固定液：纯酒精60ml冰醋酸10ml氯仿30ml,也可以选用75%酒精配制1)过碘酸酒清夜配法:过碘酸(HIO.2HO)0.4g95%酒精35mlM/5醋酸钠(2.72g+蒸馏水100ml)5ml蒸馏水10ml保存于冰箱内,用棕色瓶,可用两周.2)Schiff氏液:0.5克碱性品红加入100毫升蒸馏水中,时时摇动三角瓶5分钟,使之充分溶解.冷却至50℃后过滤加入10毫升1N盐酸.冷却至25℃,加入0.5-1克偏重硫酸钠,在室温中至少静置24小时,然后密封冰箱保存.3)Schiff氏酒 配置Schiff氏液11.5ml1NHCI0.5ml纯酒精23ml4)亚硫酸水1%偏重亚硫酸蒸馏水180ml的树胶溶解浙江品牌糖原染色试剂盒厂家批发价故PAS染色有助于三种急性白血病类型的鉴别。

PAS染色试剂配制及染色方法：1.材料与方1.1 实验材料新鲜小白鼠肝脏、肾脏标本各30例，均来自我室实验材料。1.2 主要试剂1.2.1 AAF固定液又称酒精醋酸福尔马林混合固定液，其配方：无水乙醇80mL，冰醋酸5mL、甲醛10mL。1.2.2 Carnoy固定液 氯仿300mL，冰醋酸100mL，95％酒精600mL。1.2.3 过碘酸溶液 0.5g过碘酸（HIO）溶于100mL蒸馏水或者70％酒精溶液中，或者按如下配方配制：过碘酸0.8g，95％乙醇70mL，醋酸钠0.27g，水20mL。待溶解后置于4℃冰箱避光保存。1.2.4 无色品红液（Schiff氏液） 在三角烧内加入蒸馏水500mL，煮沸后，在保持微沸的情况下，加入碱性品红2.5g，并不断摇动约5min（勿使之沸腾），使碱性品红彻底溶解（溶解液为深红色）。冷却到50℃时，过滤，加入1N盐酸50mL，再待冷却至25℃时加入偏重亚硫酸钠2.5g，塞住瓶口，摇动容器以充分混合（此时颜色明显变淡），然后避光放置或冰箱内24h

PAS技术是很少可检测不同种类的黏液物质(如糖原、黏蛋白和糖蛋白)的方法，但PAS技术却不能区别黏蛋白和糖原。若要冸确鉴别黏液物质(如黏蛋白或糖原)，需加入糖原消化步骤。大多数情冴下可用α–淀粉酶或麦芽淀粉酶来催化糖原的糖苷键水解，形成水溶性的双糖-麦芽糖，在应用PAS技术之前将糖原从组织切片上除去。人类的唾液被认为是消化糖原的一种有效手段，但是出于安全以及缺乏标冸唾液的考虑，不主张应用唾液。所以网状纤维的组织化学染色，在临床病理诊断上占着相当重要的位置。生物膜与细胞器的研究。

染色流程相对简便、染液易配制的染色方法；选择染色流程简便的方法，无论对于量较多的整批次染色，还是较少量的染色均能够节省时间、更为便捷。选择染液易配制的方法，对自配染液（尤其是保存较短的染液）是较为重要的选择，不容易造成因染液配制问题而影响染色结果。如显示弹性纤维。醛品红染色法无论是从染色流程，还是染液配制都要比铁苏木精、间苯二酚碱性品红等染色方法要简单方便、省时，同时阳性着染对比度也很明显。特异性高、传统或经典的染色方法；特异、传统/经典的一些染色法在特殊染色方法的选择中往往作为选择。如显示淀粉样物质。在染色过程中较好不要在玻片上贴标签纸。提供糖原染色试剂盒厂家现货

多糖主要指糖原，它是一种胶样液态存在于肝细胞、骨骼肌、心肌等处。上海口碑好的糖原染色试剂盒厂家批发价

糖原染色法：染色原理细胞胞浆中存在糖原或多糖类物质（如糖蛋白、粘多糖、糖脂、粘蛋白等），过碘酸能使细胞内的多糖乙二醇基氧化为二醛基，其与Schiff试剂中的无色品红结合后呈现紫红色，沉积在细胞内多糖所在之处。染色步骤：1.组织石蜡包埋切片后脱蜡至水，蒸馏水洗2min（细胞爬片4%多聚甲醛固定后水洗）；2.滴加过碘酸溶液，氧化5min；3.蒸馏水洗10min；4.滴加Schiff试剂，侵染10-20min；5.倾去Schiff试剂，流水冲洗10min；6.滴加苏木素染色液，染核1-2min；7.流水冲洗5min；8.酸性乙醇分化液分化。上海口碑好的糖原染色试剂盒厂家批发价