PCR实验技术中的不对称PCR（AsymmetricPCR）介绍：不对称PCR的基本原理是采用不等量的引物产生大量的单链DNA（ss-DNA）。这两种引物分别称为限制性引物与非限制性引物；其比较好比例一般为1：50~1：100，关键是限制引物的量。限制性引物太多太少，均不利于ss-DNA.不对称PCR反应过程：一般来说，在不对称PCR反应中，在开始的20-25个循环中，两个比率不对称的扩增引物产生出双链DNA，当限量的那个引物耗光后，随后的5-10个循环就产生出ssDNA.产生的ds-DNA与ss-DNA由于分子量不同，可以通过电泳分离。有没有推荐的pcr检测外包公司？荧光定量pcr是什么意思
PCR实验技术中的3’RACE-PCR介绍：利用mRNA的3‘末端的poly(A)尾巴作为一个引物结合位点，以连有SMART寡核营酸序列通用接头引物的Oligo(dT)30MN作为锁定引物反转录合成标准1号链cDNA.然后用一个基因特异引物GSP1(genespecificprimer,GSP)作为上游引物，用一个含有部分接头序列的通用引物UPM(universalprimer,UPM)作为下游引物，以cDNA1号链为模板，进行PCR循环，把目的基因3‘末端的。DNA的片段扩增出来。
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PCR反应的特异性强，其决定因素为：①引物与模板DNA特异正确的结合；②碱基配对原则；③TaqDNA聚合酶合成反应的忠实性；④靶基因的特异性与保守性。其中引物与模板的正确结合是关键。引物与模板的结合及引物链的延伸是遵循碱基配对原则的。聚合酶合成反应的忠实性及TaqDNA聚合酶耐高温性，使反应中模板与引物的结合（复性）可以在较高的温度下进行，结合的特异性明显增加，被扩增的靶基因片段也就能保持很高的正确度。再通过选择特异性和保守性高的靶基因区，其特异性程度就更高。
pcr防止污染的方法(一)合理分隔实验室:将样品的处理、配制PCR反应液、PCR循环扩增及PCR产物的鉴定等步骤分区或分室进行。(二)吸样器:吸样器污染是一个值得注意的问题。由于操作时不慎将样品或模板核酸吸入器内或粘上器头是一个严重的污染源，因而加样或吸取模板核酸时要十分小心。(三)预混和分装PCR试剂:所有的PCR试剂都应小量分装，如有可能，PCR反应液应预先配制好，然后小量分装，-20℃保存。以减少重复加样次数，避免污染机会。另外，PCR试剂，PCR反应液应与样品及PCR产物分开保存，不应放于同一冰盒或同一冰箱。(四)防止操作人员污染，使用一次性手套、吸头、小离心管应一次性使用。(五)设立适当的阳性对照和阴性对照，阳性对照以能出现扩增条带的比较低量的标准病原体核酸为宜，并注意交叉污染的可能性，每次反应都应有一管不加模板的试剂对照及相应不含有被扩增核酸的样品作阴性对照。(六)减少PCR循环次数，只要PCR产物达到检测水平就适可而止。(七)选择质量好的Eppendorf管，以避免样本外溢及外来核酸的进入，打开离心管前应先离心，将管壁及管盖上的液体甩至管底部。pcr内标不出来的原因是什么？
PCR实验技术中的MSP甲基化特异PCR介绍：一般调控区保持甲基化状态，基因不表达直接干扰转录因子和启动子识别位点的结合与转录抑制因子结合引起基因沉默改变染色质的结构MSP甲基化特异PCR是用对苯二酚和亚硫酸氢钠处理氢氧化钠变性的基因组DNA，使得未甲基化的C转化为T.按照C转换T后的基因序列设计出来的引物扩出目的基因。由于甲基化CpG岛中的C不能被转化为T，用以上的引物将不会扩出目的基因。通过上述手段就能达到识别基因组DNA甲基化与否的目的。推荐一些专业做pcr比较好的生物公司。陕西高质量pcr怎么选择
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PCR实验技术中的热启动PCR介绍：热启动PCR是除了好的引物设计之外，提高PCR特异性的重要的方法之一。尽管TaqDNA聚合酶的比较好延伸温度在72℃，聚合酶在室温仍然有活性。因此，在进行PCR反应配制过程中，以及在热循环刚开始，保温温度低于退火温度时会产生非特异性的产物。这些非特异性产物一旦形成，就会被有效扩增。在用于引物设计的位点因为遗传元件的定位而受限时，如site-directed突变、表达克隆或用于DNA工程的遗传元件的构建和操作，热启动PCR尤为有效。荧光定量pcr是什么意思
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