实验失败常见问题分析有哪些：
为什么在显微镜下观察发现所有的切片都成阴性？
答：这种现象主要是由操作不当导致，可能的原因有：1.染色操作不当，致使染色失败；2.漏加一种抗体或者制备出的抗体没有活性；3.缓冲液中有叠氮化钠，抑制了酶的活性；4.复染或脱水剂使用不当等。建议逐一排查，找到原因后重新进行实验。
在显微镜下观察发现所有的切片都成阳性，这是为什么？答：与上一个问题类似，出现的原因也是试验操作存在问题，可能的原因有：1.切片在染色过程中抗体过浓，或者干片了；使用的呈色底物溶液已变色或呈色反应时间过长；3.抗体温育的时间过长等。
在显微镜下观察发现切片的背景很深，这是为什么？答：以下几方面会导致切片的背景过深：1.蛋白质封闭不够或所用血清溶血，造成抗体的非特异性反应；2.内源性过氧化酶没有完全阻断，显色过程中过氧化酶与酶底物反应，造成背景；3.底物呈色反应时间过长或呈色反应后漂洗不彻底。 免疫组化的那些小知识，都在这里！陕西做得好的免疫组化
免疫组化结果中的假阴性是指所有抗体标记的切片均呈阴性，无阳性信号，假阴性结果不是真实的反应。导致假阴性结果的原因有:(1)抗原修复方法选择不当，根据不同的抗原特点采用不同的修复方法，大多数抗体要求热修复，热修复又包括高压修复、微波修复及煮沸热修复;而对某些细胞内抗原和细胞间质抗原需要用酶消化，如表皮生长因子(EGFR)要求胃蛋白酶(Pepsin)消化，而Vimentin则不用修复;(2)一抗本身的问题:一抗效价降低或失效。在免疫组化中染色结果的假阴性会导致错诊或漏诊，进而影响临床诊断及延误医疗。解决这一问题的可通过设立阳性对照，比较两者染色结果。若阳性对照有表达，表明试剂和染色体系及实验步骤均无问题;若阳性对照无表达，则检测过程中某一试剂或某个步骤存在问题，应逐一查找原因。江西细胞免疫组化外包英瀚斯生物做免疫组化怎么样？
细胞爬片免疫组化检测实验步骤
1、选择贴壁良好的细胞爬片，用4%多聚甲醛固定后15min后自然晾干。
2、PBS洗3次，每次5min。3、切片放入3%过氧化氢溶液，室温下孵育10min，以阻断内源性过氧化物酶。
4、PBS洗3次，每次5min，甩干后5%BSA封闭20min（封闭电荷）。
5、去除BSA液，每张切片加入50μl稀释的一抗覆盖组织，4℃过夜。
6、PBS洗3次，每次5min。
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7、去除PBS液，每张切片加50μl-100μl相应种属的二抗，4℃孵育50min。
8、PBS洗3次，每次5min。
9、去除PBS液，每张切片加50-100μl新鲜配制DAB溶液，显微镜控制显色。
10、显色完全后，蒸馏水或自来水冲洗，苏木素复染，1%盐酸酒精分化（1s），自来水冲洗，氨水返蓝，流水冲洗。
11、切片经过梯度酒精（70-100%）10min一个梯度，脱水干燥，二甲苯透明，中性树胶封固。
免疫组化技术有哪些应用？
定位和定性是免疫组化比较大的优势。相比于其他蛋白检测方法，免疫组化具有定位较直接准确、定性灵敏度高，是定位检测分析优先方法，尤其对于有些因子的转位研究十分有用。免疫组织化学的临床应用主要包括以下几方面：恶性**的诊断与鉴别定性；确定转移性恶性**的原发部位；对某类**进行进一步的病理分型；软组织**诊断；为临床提供治疗方案的选择；近年来，随着免疫组织化学技术的发展和各种特异性抗体的出现，使许多疑难**得到了明确诊断。免疫组化在**诊断和鉴别诊断中的实用价值受到了普遍的认可，其在低分化或未分化**的鉴别诊断时，准确率可达50%-75%。
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关于免疫组化，抗体和抗原之间的结合具有高度的特异性，免疫组织化学正是利用了这一原理。先将组织或细胞中的某种化学物质提取出来，以此作为抗原或半抗原，通过免疫动物后获得特异性的抗体，再以此抗体去探测组织或细胞中的同类的抗原物质。由于抗原与抗体的复合物是无色的，因此还必须借助于组织化学的方法将抗原抗体结合的部位显示出来，以其达到对组织或细胞中的未知抗原进行定性，定位或定量的研究。南京英瀚斯生物科技有限公司有设计免疫组化的实验哦！如果您对此有希望了解更多，可以与我们联系！英瀚斯生物，组织包埋、切片、染色、免疫组化拍照、报告分析，一站式搞定！陕西靠谱免疫组化要多久
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免疫组化的发展路程？在临床病理诊断中，免疫组织化学(IHC)是一种很重要的技术和手段，从20世纪70年代开始，免疫组化技术就应用于病理诊断，对于诊断cancer、cancer分类、判断预后产生了巨大的影响，同时也扩展了人们对于各种疾病及cancer形成过程的认识，提高了病理诊断与研究水平。但是，随着免疫组化的广泛应用，发现免疫组化技术存在一些局限性。深入研究免疫组化原理和技术，必须熟悉各种抗体真阳性反应部位，实现实验室间免疫组化标准化，使免疫组化在病理诊断中发挥比较大的辅助作用。如果您有免疫组化相关的实验，可以与我们英瀚斯生物进行联系。陕西做得好的免疫组化
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