pcr防止污染的方法(一)合理分隔实验室:将样品的处理、配制PCR反应液、PCR循环扩增及PCR产物的鉴定等步骤分区或分室进行。(二)吸样器:吸样器污染是一个值得注意的问题。由于操作时不慎将样品或模板核酸吸入器内或粘上器头是一个严重的污染源，因而加样或吸取模板核酸时要十分小心。(三)预混和分装PCR试剂:所有的PCR试剂都应小量分装，如有可能，PCR反应液应预先配制好，然后小量分装，-20℃保存。以减少重复加样次数，避免污染机会。另外，PCR试剂，PCR反应液应与样品及PCR产物分开保存，不应放于同一冰盒或同一冰箱。(四)防止操作人员污染，使用一次性手套、吸头、小离心管应一次性使用。(五)设立适当的阳性对照和阴性对照，阳性对照以能出现扩增条带的比较低量的标准病原体核酸为宜，并注意交叉污染的可能性，每次反应都应有一管不加模板的试剂对照及相应不含有被扩增核酸的样品作阴性对照。(六)减少PCR循环次数，只要PCR产物达到检测水平就适可而止。(七)选择质量好的Eppendorf管，以避免样本外溢及外来核酸的进入，打开离心管前应先离心，将管壁及管盖上的液体甩至管底部。英瀚斯生物pcr，不只是检测，还有专业数据分析。安徽常见pcr怎么选择
PCR有着普遍的应用，不仅在基础研究方面，还包括医学诊断、法医学和农业科学等各大领域，PCR技术不仅可用于基础研究，还适用于日常的临床诊断、法医学调查和农业生物技术研究。这些应用需要可靠的性能、先进的灵敏度和严格的标准。因此，热循环仪和试剂必须符合这些要求和目的。分子诊断的实例包括基因检测、基因突变检测以及疾病检测。在法医学中，利用PCR进行人类身份鉴定是通过对独特的短串联重复序列（STR）进行扩增而区分个体的。在农业学中，PCR在食物病原体检测、育种植物基因分型和GMO测试中具有重要作用。综上所述，自20世纪80年代引入以来，PCR作为一种实用工具，在发现生物学、医学诊断、法医学和农业学领域一直有着普遍而重要的应用。安徽常见pcr怎么选择英瀚斯生物，专业仪器，丰富经验，高质量pcr。
PCR的临床应用主要用于针对疾病遗传病等。PCR在医学检验学中**有价值的应用领域就是对疾病的诊断。理论上，只要样本有一个病原体存在，PCR就可以检测到。一般实验室也能检出10~100基因拷贝，而目前病原体抗原检测方法一般需要105-7个病原体才可检测到。PCR对病原体的检测解决了免疫学检测的“窗口期”问题，可判断疾病是否处于隐性或亚临床状态。定量PCR研究资料已表明，病原体数量与疾病病情的轻重程度、传染性及针对效果均有相关性。许多研究表明，人类免疫缺陷病毒(HIV)后，潜伏期长短和临床症状轻重与血液中的病毒量相关；也有研究表明，HIV病毒载量低于一定值时，没有传染性。在乙型肝炎病毒、丙型肝炎病毒定量研究中发现，病毒的数量与某些药物的疗效相关。例如，干扰素针对对肝炎病毒高拷贝者不敏感，低拷贝者敏感；而有些药物则具有***降低病毒高拷贝的作用。
PCR反应的比较大特点是具有较大扩增能力与极高的灵敏性，但令人头疼的问题是易污染，极其微量的污染即可造成假阳性的产生。主要原因有：1、标本间交叉污染；2、PCR试剂的污染；3、PCR扩增产物污染；4、实验室中克隆质粒的污染。一个好的实验室，要时刻注意污染的监测，考虑有无污染是什么原因造成的污染，以便采取措施，防止和消除污染。1、阳性对照：在建立PCR反应实验室及一般的检验单位都应设有PCR阳性对照，它是PCR反应是否成功、产物条带位置及大小是否合乎理论要求的一个重要的参考标志。2、阴性对照：每次PCR实验务必做阴性对照。它包括：（1）标本对照：被检的标本是血清就用鉴定后的正常血清作对照；被检的标本是组织细胞就用相应的组织细胞作对照。（2）试剂对照：在PCR试剂中不加模板DNA或RNA,进行PCR扩增，以监测试剂是否污染。3、重复性试验。4、选择不同区域的引物进行PCR扩增。如何挑选pcr检测试剂盒？
PCR实验技术中的高GC含量PCR（GC-richPCR）介绍：具有高GC含量（>65%）的模板由于G和C碱基间的强氢键影响，比较难以扩增。高GC含量序列同时也涉及二级结构。因此，高GC含量序列可使DNA聚合酶在扩增时卡住，从而影响了DNA的合成。为了扩增高GC含量片段，双链模板必须分离，以便引物结合及DNA聚合酶读取序列。为了克服强GC相互作用，较常用的方法是依靠PCR添加剂或共溶剂来帮助DNA变性（图6A），如DMSO。这些试剂通常会降低引物的Tm，所以退火温度也需做相应的调整。高合成能力的DNA聚合酶由于其与模板的强结合能力，有助于高GC含量模板的PCR扩增（图6B）。高热稳定性DNA聚合酶也有益于高GC含量PCR扩增，因为更高的变性温度（如98℃代替95℃）可促进解链和PCR扩增。荧光定量pcr的ct值怎么分析？样本pcr实验
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PCR的假阳性主要原因之一出现非特异性扩增带：PCR扩增后出现的条带与预计的大小不一致，或大或小，或者同时出现特异性扩增带与非特异性扩增带。非特异性条带的出现，其原因：一是引物与靶序列不完全互补、或引物聚合形成二聚体。二是Mg2+离子浓度过高、退火温度过低，及PCR循环次数过多有关。其次是酶的质和量，往往一些来源的酶易出现非特异条带而另一来源的酶则不出现，酶量过多有时也会出现非特异性扩增。其对策有：必要时重新设计引物。减低酶量或调换另一来源的酶。降低引物量，适当增加模板量，减少循环次数。适当提高退火温度或采用二温度点法（93℃变性，65℃左右退火与延伸）。PCR的假阳性主要原因之一出现片状拖带或涂抹带：PCR扩增有时出现涂抹带或片状带或地毯样带。其原因往往由于酶量过多或酶的质量差，dNTP浓度过高，Mg2+浓度过高，退火温度过低，循环次数过多引起。其对策有：减少酶量，或调换另一来源的酶。②减少dNTP的浓度。适当降低Mg2+浓度。增加模板量，减少循环次数。安徽常见pcr怎么选择
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