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PCR实验技术中的锚定PCR（AnchoredPCR）介绍：锚定PCR主要用于分析具有可变末端的DNA序列，Loh等用A-PCR对人外周血淋巴细胞T细胞受体α-链的mRNA的多变性进行了分析。先合成cDNA，并用末端脱氧核苷酸转移酶在其3’-可变区末端加上一个PolyG尾巴。Loh等恒定区与可变区连接部位设一个引物，另一个引物是一个具5’-polyG尾巴的引物。带有PolyG尾巴的引物是一个固定点，它可以并与PolyG尾巴结合，无论其余部分序列如何，只识别片段末端，利用此法可从前述mRNA中检出至少20种不同序列，每一种都是独特的，表明A-PCR不对任何特殊序列有倾向性结果，可用于T细胞及其它部位抗体基因的研究。英瀚斯生物分子生物学平台，配备专业定量pcr仪。福建有哪些pcr技术

PCR实验技术中的兼并引物PCR（DegeneratePrimer）介绍：兼并引物是指代替编码单个氨基酸所有不同碱基可能性的不同序列的混合物。兼并度越低，产物特异性越强。设计引物时应尽量选择兼并性小的氨基酸，并避免引物3’末端兼并，因为3'端末尾3个碱基的退火足以在错误位点起始PCR；次黄嘌呤可以同所有的碱基配对，降低引物的退火温度。因此，在引物设计时,比较选择兼并性小的氨基酸，并避免引物3'端被兼并，因为3'端末尾3个碱基的退火足以在错误位点起始PCR;次黄嘌呤可以同所有的碱基配对，降低引物的退火温度。实验证明，用脱氧肌苷引物进行PCR,可以代替编码蛋白的多种兼并密码子中的兼并碱基。荧光定量pcr要多久实时荧光定量PCR是什么原理？

PCR的假阳性主要原因之一引物设计不合适：选择的扩增序列与非目的扩增序列有同源性，因而在进行PCR扩增时，扩增出的PCR产物为非目的性的序列。靶序列太短或引物太短，容易出现假阳性。需重新设计引物。靶序列或扩增产物的交叉污染：这种污染有两种原因：一是整个基因组或大片段的交叉污染，导致假阳性。这种假阳性可用以下方法解决：操作时应小心轻柔，防止将靶序列吸入加样器内或溅出离心管外。除酶及不能耐高温的物质外，所有试剂或器材均应高压消毒。所用离心管及样进器头等均应一次性使用。必要时，在加标本前，反应管和试剂用紫外线照射，以破坏存在的核酸。二是空气中的小片段核酸污染，这些小片段比靶序列短，但有一定的同源性。可互相拼接，与引物互补后，可扩增出PCR产物，而导致假阳性的产生，可用巢式PCR方法来减轻或消除。

PCR实验技术中的RT-PCR介绍：在RT-PCR中，通过逆转录（RT）将RNA转化为cDNA，然后通过聚合酶链式反应（PCR）扩增cDNA（图1）。利用cDNA扩增步骤，有望对初始RNA进行进一步研究，即便RNA样本数量有限或低丰度表达。RT-PCR的常见应用包括表达基因检测、转录物变异检测，以及克隆和测序用cDNA模板制备。由于逆转录可为PCR扩增和下游实验提供cDNA模板，因此，它是实验成功的关键步骤之一。选定的逆转录酶应对所有样本均具有**高效率，即便是难转录RNA样本，如降解、抑制剂残留或具有高度二级结构的RNA样本。一步法和两步法是两种**常用的RT-PCR方法，每种方法都具有各自的优缺点。RNA的多聚酶反应（RT-PCR）是以RNA为模板，联合逆转录反应（reversetranscription，RT）与PCR，可用于检测单个细胞或少数细胞中少于10个拷贝的RNA模板。pcr检测做不好都有哪些原因？

PCR实验技术中的3’RACE-PCR介绍：利用mRNA的3‘末端的poly(A)尾巴作为一个引物结合位点，以连有SMART寡核营酸序列通用接头引物的Oligo(dT)30MN作为锁定引物反转录合成标准1号链cDNA.然后用一个基因特异引物GSP1(genespecificprimer,GSP)作为上游引物，用一个含有部分接头序列的通用引物UPM(universalprimer,UPM)作为下游引物，以cDNA1号链为模板，进行PCR循环，把目的基因3‘末端的。DNA的片段扩增出来。

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PCR样本可分2种，DNA样本和RNA样本。一，DNA样本：已经提取好的DNA样本，负80度保存，干冰运输；血液样本，需全血，加入抗凝剂，抗凝管4度保存；组织样本，需冻存管或干净灭菌的离心管装，负80度保存，干冰运输；细胞样本，用胰酶消化后的细胞沉淀，负20度或负80度保存。二，RNA样本：提取好的RNA样本，负80度保存，干冰运输；血液样本，全血，加入抗凝剂，4度冰箱保存；组织样本，冻存管或干净灭菌离心管，负80度保存，干冰运输；细胞样本，用胰酶消化后的细胞沉淀，负20度或负80度保存。长时间保存，可加Trizol，其中血液用TrizolLS组织和细胞沉淀用Trizol。福建有哪些pcr技术

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