病理医师日常工作中经常说的一句话应该就是“做个免疫组化吧”；不管是临床医师，还是患者，他们问的多的问题则是“为什么要做免疫组化？”病理医师通过“特殊染色”来进行细胞的识别。这一做法的依据是特定细胞和组织中的成分不同、则化学性质不同，通过染色的方法则可以呈现不同颜色。不过，由于组织固定或储存等，会造成相应物质的活性降低甚至消失，因而限制了特殊染色方法的应用。随着免疫学研究的进展，根据抗原与相应抗体间特异性结合的性质，则有了现在免疫组化的方法：不同细胞、不同组织中抗原有一定差异，抗体与被测组织中的特定抗原结合，进而通过一定显色方法将结合的抗体显示出来。如有相应显色，则证实可能有被测抗原；无显色则可能无被测抗原。当然，这一方法中需注意相应的“例外”，如抗体的非特异性结合、非特异性显色，则容易造成“假阳性”；或者虽有相关抗原、但所用抗体与该抗原并未结合等，则容易造成“假阴性”。随着免疫组化的应用经验的增加，这些问题在常规应用中尽量得以避免，前者如各种显色方法的优化；后者如抗原修复方法的优化、新型抗体开发及选择。英瀚斯生物，专业病理染色切片平台，免疫组化效果好！做得好的免疫组化推荐
英瀚斯生物为您整理免疫组化实验步骤
1、石蜡切片置于65℃烘箱中烘片2h，脱蜡至水，用PBS冲洗三次，每次5min。
2、切片置于EDTA缓冲液中微波修复，中火至沸后断电，间隔10min低火至沸。
3、自然冷却后PBS洗3次，每次5min。4、切片放入3%过氧化氢溶液，室温下孵育10min，以阻断内源性过氧化物酶。
5、PBS洗3次，每次5min，甩干后5%BSA封闭20min（封闭电荷）。
6、去除BSA液，每张切片加入50μl稀释的一抗覆盖组织，4℃过夜。
7、PBS洗3次，每次5min。
8、去除PBS液，每张切片加50μl-100μl相应种属的二抗，4℃孵育50min。
9、PBS洗3次，每次5min。
10、去除PBS液，每张切片加50-100μl新鲜配制DAB溶液，显微镜控制显色。
11、显色完全后，蒸馏水或自来水冲洗，苏木素复染，1%盐酸酒精分化（1s），自来水冲洗，氨水返蓝，流水冲洗。
12、切片经过梯度酒精（70-100%）10min一个梯度，脱水干燥，二甲苯透明，中性树胶封固。 做得好的免疫组化推荐免疫组化常见问题原因分析！
免疫组化的DAB显色时间如何把握？
1、DAB显色时间不是固定的，主要由显微镜下控制显色时间，到出现浅棕色本底时即可冲洗；
2、DAB显色时间很短（如几秒或几十秒）就出现很深的棕褐色，这很可能说明你的抗体浓度过高或抗体孵育时间过长，需要下调抗体浓度或缩短你的抗体孵育时间；
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3、此外，若很短时间就出现背景很深，还有可能你前面的封闭非特异性蛋白不全，需要延长封闭时间；
4、DAB显色时间很长（如超过十几分钟）才出现阳性染色，一方面可能说明你的抗体浓度过低或孵育时间过短（比较好一抗4度过夜）；另一方面就是封闭时间过长。
免疫组化的局限性：在病理诊断中，随着各种抗体新的用途不断被发现及越来越多的新型抗体的出现，免疫组化在病理诊断和医疗中已有了很重要的位置，对于cancer诊断、鉴别诊断、分类及诸多方面产生了重大的影响。但是免疫组化技术还存在着缺陷和不足，作为病理医生和病理技术人员不仅要充分认识到缺陷和不足，而且要努力避免由于缺陷和不足给诊断带来的误区，这就要求病理医生和病理技术人员在工作中不断学习与研究，在实际操作中总结经验教训，分析失败原因，努力实现操作规范化、标准化，才能充分发挥免疫组化在病理诊断及鉴别诊断、临床医疗中的指导作用。有没有推荐的免疫组化外包公司？
免疫组化中IHC vs ICC的区别。英瀚斯生物为您说明。除了生物学来源，IHC和ICC在样品处理的程度上也有所不同。ICC需要透化，要么通过固定过程，要么是单独的透化步骤，这样抗体才能与细胞内的靶点相结合。而IHC可能不要单独的透化步骤，这取决于切片的厚度和固定方法。包埋在石蜡中的IHC切片必须进一步处理，才能进行抗体染色。一旦处理好样品，IHC和ICC的染色操作就几乎没什么差异了。当然，就染色而言，根据所使用的抗体来优化还是少不了的。动物、细胞的免疫组化、免疫荧光，就找英瀚斯生物！做得好的免疫组化推荐
免疫组化失败的原因？做得好的免疫组化推荐
免疫组化实验所用的组织和细胞标本是什么样的？
实验所用主要为组织标本和细胞标本两大类，前者包括石蜡切片（病理大片和组织芯片）和冰冻切片，后者包括组织印片、细胞爬片和细胞涂片。其中石蜡切片是制作组织标本**常用、**基本的方法，对于组织形态保存好，且能作连续切片，有利于各种染色对照观察；还能长期存档，供回顾性研究；石蜡切片制作过程对组织内抗原暴露有一定的影响，但可进行抗原修复，是免疫组化中优先的组织标本制作方法。
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