PCR样本可分2种，DNA样本和RNA样本。一，DNA样本：已经提取好的DNA样本，负80度保存，干冰运输；血液样本，需全血，加入抗凝剂，抗凝管4度保存；组织样本，需冻存管或干净灭菌的离心管装，负80度保存，干冰运输；细胞样本，用胰酶消化后的细胞沉淀，负20度或负80度保存。二，RNA样本：提取好的RNA样本，负80度保存，干冰运输；血液样本，全血，加入抗凝剂，4度冰箱保存；组织样本，冻存管或干净灭菌离心管，负80度保存，干冰运输；细胞样本，用胰酶消化后的细胞沉淀，负20度或负80度保存。长时间保存，可加Trizol，其中血液用TrizolLS组织和细胞沉淀用Trizol。pcr内标不出来的原因是什么？河北靠谱pcr扩增
PCR反应的比较大特点是具有较大扩增能力与极高的灵敏性，但令人头疼的问题是易污染，极其微量的污染即可造成假阳性的产生。主要原因有：1、标本间交叉污染；2、PCR试剂的污染；3、PCR扩增产物污染；4、实验室中克隆质粒的污染。一个好的实验室，要时刻注意污染的监测，考虑有无污染是什么原因造成的污染，以便采取措施，防止和消除污染。1、阳性对照：在建立PCR反应实验室及一般的检验单位都应设有PCR阳性对照，它是PCR反应是否成功、产物条带位置及大小是否合乎理论要求的一个重要的参考标志。2、阴性对照：每次PCR实验务必做阴性对照。它包括：（1）标本对照：被检的标本是血清就用鉴定后的正常血清作对照；被检的标本是组织细胞就用相应的组织细胞作对照。（2）试剂对照：在PCR试剂中不加模板DNA或RNA,进行PCR扩增，以监测试剂是否污染。3、重复性试验。4、选择不同区域的引物进行PCR扩增。四川高质量pcr检测做pcr检测，需要注意哪些事项？
PCR实验室设计的中心问题是如何避免污染。在实际工作中，常见的有以下几种污染类型：扩增产物的污染；天然基因组DNA的污染；试剂的污染以及标本间的污染。由于一旦发生污染，实验就必须停止，直到找到污染源为止，而且实验结果必须作废，需重新进行实验。所以发生污染后再围绕实验室来寻找污染源不但耗时而且繁琐，浪费人力物力。因此要避免污染，首先应是预防，而不是排除。PCR扩增检验实验室原则上分为四个单独的工作区域：试剂贮存和准备区、标本制备区、扩增反应混合物配制和扩增区、扩增产物分析区。为避免交叉污染，进入各个工作区域必须严格遵循单一方向进行，即只能从试剂贮存和准备区→标本制备区→扩增反应混合物配制和扩增区→扩增产物分析区。 各实验区之间的试剂及样品传递应通过传递窗进行。
原位PCR就是在组织细胞里进行PCR反应，它结合了具有细胞定位能力的原位杂交和高度特异敏感的PCR技术的优点，是细胞学科研与临床诊断领域里的一项有较大潜力的新技术。原位PCR是Hasse等于1990年建立的，实验用的标本是新鲜组织、石蜡包埋组织、脱落细胞、血细胞等。其基本方法为：1、固定组织或细胞:将组织细胞固定于预先用四氟乙烯包被的玻片上，并用多聚甲醛处理，再灭活除去细胞内源性过氧化物酶。2、蛋白酶K消化处理:用60ug/ml的蛋白酶K将固定好的组织细胞片55℃消化处理2h后，96℃2min以灭活蛋白酶K。3、PCR扩增:在组织细胞片上，加PCR反应液，覆盖并加液体石蜡后，直接放在扩增仪的金属板上，进行PCR循环扩增。有的基因扩增仪带有专门用于原位PCR的装置。4、杂交:PCR扩增结束后，用标记的寡核苷酸探针进行原位杂交。5、显微镜观察结果。有没有做pcr检测比较快比较好的公司？
PCR实验技术中的RT-PCR一步法和两步法的优缺点介绍：一步法：利用同一缓冲液，在同一体系中加入逆转录酶、引物、Taq酶、4种dNTP直接进行mRNA反转录与PCR扩增。发现Taq酶不仅具有DNA多聚酶的作用，而且具有反转录酶活性，可利用其双重作用在同一体系中直接以mRNA为模板进行反转录和其后PCR扩增，从而使mRNA的PCR步骤更为简化。所需样品量减少到比较低限度，临床小样品的检测非常有利。用一步法扩增可检测出总RNA中小于1ng的低丰度mRNA.该法可用于低丰度mRNA的cDNA文库的构建及特异cDNA的克隆，并有可能与Taq酶的测序技术相组合，使得自动反转录、基因扩增与基因转录产物的测序在单管中进行。两步法：由于单管反应时RT和PCR都不能在比较好条件下进行并且容易相互干扰，常只适宜用基因特异引物扩增较短的基因，及定量PCR.两步法则是将RT和PCR分别进行，这样使得两个反应充分发挥各自的特点，更为灵活而且严谨，适合那些GC含量、二级结构严重的模板或者是未知模板，以及多个基因的RT-PCR。荧光定量pcr的原理和步骤是什么？内蒙古高效pcr实验室
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