HE染色注意事项：1、染色时调节pH值很重要。如果组织块在福尔马林中固定时间长，组织酸化而影响细胞核着色。因此，要在自来水中冲洗时间长一些或在饱和碳酸锂水溶液中处理10-30min，这样可以使细胞核着色较深。染伊红时胞浆着色不佳，可在伊红溶液中滴加1-2滴冰醋酸。2、切片染苏木精后，分色这一步是关键，应在显微镜下控制进行，一般以细胞核染色清楚（晰）而细胞质基本无色为佳。如果过分延长分色时间将导致染色太浅，应重新染色后再行分色。3、切片经酒精脱水后，入二甲苯时可出现白色不透明状态，此为脱水不彻底，应将切片退回无水酒精，更换酒精、二甲苯，以求彻底脱水与透明。4、在染色过程中不要让切片干燥，以免切片收缩、变形，影响神经元形态。5、切片从二甲苯取出或进入二甲苯前，切片周边均应擦干净或吸干多余水分。6、***封固时，要用中性树脂，防止日后褪色，盖片要选大于组织块的面积，如漏出一部分不久将会褪色，所用树脂浓度要适当，树脂封固时不能有气泡。HE染色是组织学、病理学教学与科研中比较基础、使用比较普遍的技术方法之一。安徽质量好的HE染色分析
HE染色等常规染色，组化或是荧光优先推荐做石蜡切片。原因：石蜡切片对组织的形态保存比冰冻切片好，并且对抗原基本无影响。脂质染色（油红O染**odipy染色，尼罗红染色）必须做冰冻切片，不能做石蜡切片。以下染色必须要新鲜或冷冻组织冰冻切片：ROS染**-半乳糖甘酶染色，ATP染色，胆固醇染色。如果标本已经放在-80°冰箱冷冻了之后又想要做石蜡切片，将标本取出来千万不要解冻直接放于固定液内固定（在固定液内边解冻边固定）。组织形态结构保存完好顺序：新鲜组织立即投入固定液内固定石蜡切片＞组织-80°冷冻后投入固定液内固定石蜡切片＞新鲜组织立即投入固定液内固定冰冻切片＞组织-80°冷冻后直接冰冻切片。山西结果客观的HE染色分析关于HE染色，常用的结果分析原理。
HE染色：在组织病理学中，苏木素-伊红染色是一种日常使用比较普遍的常规染色方法。常规苏木素染色的对比染色是用伊红，也有采用焰红，因为焰红比伊红色泽更鲜明，还有采用橘黄G，比布里希猩红，波尔多红等作为对比染色。伊红是比较常用的胞质染料，本身溶于醇而不溶于水，为砖红色粉末状或酱红色结晶。配方：伊红Y（水溶）0.5-1g，蒸馏水99ml。如果取用伊红Y（醇溶性）应当溶于99ml 75%或95%的乙醇中。如果在伊红液中加入0.5ml冰醋酸，可以加速其染色过程，使得胞质的色泽更加艳丽。结果是细胞核呈蓝色，胞质、肌肉、结缔组织、红细胞和嗜伊红颗粒呈不同程度的红色。钙盐和各种微生物也可染成蓝色或紫蓝色。
HE染色不管怎么操作，始终无法染色或淡染答：这种情况一般因为组织固定时采用了酸性甲醛;或者组织在甲醛中浸泡时间太长;或者久置的甲醛变性分解为甲酸。补救：防患于未然，要么使用新鲜的中性甲醛固定，要么在存放的甲醛中加一点碳酸钠中和甲酸。对于已经固定的组织可考虑再次固定；对于已经制出的片子，染色前采用5%重铬酸钾溶液浸泡半小时以上，然后自来水漂洗5min，可改善染色。也可以将切片放入3%硫酸铁铵溶液中，补充染色媒介，增强苏木素与组织的亲和力(苏木素染色必须要媒介才能染上，单纯的苏木素与组织的亲和力很弱)。HE染色取材、染色以及分析方法介绍。
HE染色就是用苏木精和伊红对细胞内的核糖体和细胞质染色的方法。H:Hematoxylin，苏木精E:Eosin，伊红苏木精（Hematoxylin,H）是一种碱染料，可将细胞核和细胞内核糖体染成蓝紫色，被碱染料染色的结构具有嗜碱。伊红（，E）是一种酸染料，能将细胞质染成红色或淡红色，被酸染料染色的结构具有嗜酸。染色前，须用二甲苯脱去切片中的石蜡，再经由高浓度到低浓度酒精，***入蒸馏水，就可染色。 很多细胞在新生时期胞浆对伊红着色较淡或轻度嗜碱，当其衰老时或发生退行变则呈现嗜伊红浓染。 胶原纤维在老化和出现透明变时，伊红着色由浅变深。科研常备实验操作之HE染色。天津比较好的HE染色服务
HE染色 ,石蜡切片技术里常用的染色法之一。安徽质量好的HE染色分析
HE染色原理1、细胞核染色的原理：苏木精为碱性天然染料，可使细胞核着色。细胞核内染色质的成分主要是DNA，在DNA的双螺旋结构中，两条核苷酸链上的磷酸基向外，使DNA双螺旋的外侧带负电荷，呈酸性，很容易与带正电荷的苏木精碱性燃料以离子键或氢键结合而被染色。苏木精在碱性溶液中呈蓝色，所以细胞核被染成蓝色。2、细胞浆染色的原理：伊红是一种化学合成的酸性染料，在一定条件下可使细胞浆着色。细胞浆的主要成分是蛋白质，为两性化合物，细胞浆的染色与染液的pH在胞浆蛋白质等电点（4.7—5.0）以下时，胞浆蛋白质以碱式电离，则细胞浆带正电荷，就可被带负电荷的酸性染料染色。伊红在水中离解成带负电荷的阴离子，与胞浆蛋白质带正电荷的阳离子结合，使细胞浆着色，呈现红色。安徽质量好的HE染色分析
