苏州10K超滤离心管使用方法

注意:超滤离心管中的滤膜一旦润湿 后应避免变干。如果在预清洗后不是立即使用，则让液体保留在滤膜上，直到使用。6.使用方法：1）.将超滤内管插入所提供的一个微量离心管中。2）.向超滤管内管中加入不超过500 μL的样本,并盖上盖子。3）.将盖好盖子的超滤管放入离心转子中，让盖子的连接带朝着转子的中间;用一个类似的超滤管平衡。4）.以14,000 x g离心约10-30分钟,具体时间取决于所使用超滤管的NMWL。5）.离心结束后将整个超滤管从离心机中取出,取出内管。6）.为了回收浓缩后的溶质,将内管倒过来插在-个干净的微量离心管中。放在离心机中,让打开的盖子朝着转子的中间;用一个类似的超滤管进行平衡。以1 ,000 x g离心2分钟,使浓缩后的样本从超滤内管转移到收集管中。超滤液可以保存在收集管中。超滤离心管有不同孔径可供选择，以适应不同尺寸和类型的分子筛选需求。苏州10K超滤离心管使用方法

根据其大小，又分为1.5ml、2ml、5ml、10ml、15ml、50ml等，国产的离心管一般就是这几个规格，用的较多的也就是10ml和50ml的。如果您的离心机是配30ml或者其他规格的离心管时，就要考虑进口的了。另外，离心管还有圆底和尖底，以及螺旋盖和插盖之分。螺旋盖的离心管带有较精细的刻度，插盖的只有一个总体的容量标示。实验室常用的离心管有塑料的和玻璃的，一般塑料的用的较多，因为玻璃的离心管不能用在高速或者超速离心机上。塑料的离心管又有PP（聚丙烯）、PC(聚碳酸酯)，PE(聚乙烯)等材质。PP的管子性能相对来说比较好。塑料的离心管透明或者半透明，可以直观的看到样品离心情况，但是比较容易变形，抗有机溶剂的腐蚀性较差，所以使用寿命较短。因此，实验室一般会经常购买离心管。下面就对各种材质分别介绍一下。根据其材质的不同总体可以分为塑料和玻璃的，塑料的离心管用的较多，又可以分为PP、PC、PS等，根据不同需要，生产厂家会选择不同的塑料材料来进行制作。绍兴30K超滤离心管报价超滤离心管还可用于药代动力学和药物分析中，以确定药物代谢和药效学参数。

可以通过多个超滤管同时超滤来降低浓度，而后者通过改变不同的缓冲液直到没有蛋白质沉淀。用来浓缩蛋白质的。如果要更换缓冲液，当总蛋白溶液浓缩到1毫升左右时，轻轻添加一个新的缓冲液〈用0.22um超滤膜超滤后〉，然后连续浓缩到1毫升左右。浓缩液的之后体积取决于所需的蛋白质浓度，通常不超过500 ul，但也要浓缩到200 ul以下。根据每次至少10次的体积浓度计算，1000次以上的3次基本可以达到更换缓冲器的目的。提取之后浓缩蛋白的操作在冰上进行。黄色设备头(200ul)用于提取之后的蛋白质浓缩物。设备头沿设备头边缘轻轻插入。将蛋白溶液轻轻吹匀。注意不要触摸超滤膜。吸取浓缩液，一次较多吸200 ul，直至耗尽。之后留在管底的浓缩液不需要吸收，否则太困难，可能损坏超滤膜。之后，在无超滤膜的超滤管中加入milliq水，以防止超滤膜干燥。

我用的是3500g，4度离心，时间可以自己控制，取决于你之后的浓缩体积，我一般是200ul左右。千万别一下离心时间太长，不同的蛋白浓缩的速度不同，有的需要长时间离心，有的则一下子就好。当然也和你的蛋白是否比较纯，所用的是什么buffer，还有蛋白的浓度有关系。所以离心时要先短些时间观察一下你的浓缩速度，不要一下子浓缩过了，甚至形成沉淀就得不偿失了。另外其实他们的管子都设计的是一次性使用，所以如果想重复使用，不要离得速度太高，4000－4500RPM就差不多了，另外重复使用时要看看管壁上有没有裂纹，现在的管子好像不如从前的结实了。超滤离心管可以用于提取动植物组织中的酶、元素等生物活性分子，以进行进一步的生化学和医学研究。

离心过程中注意是否发生蛋白沉淀，导致堵管。若发生沉淀，要确定沉淀的具体原因，是蛋白浓度过高还是Buffer不合适；前者可用多根超滤管同时超滤，降低浓度的办法解决，后者的方法是换不同的缓冲溶液，直到蛋白不发生沉淀为止。用以浓缩蛋白，如果要换Buffer，在总蛋白液浓缩至1ml左右的时候，轻轻加入新的Buffer（经0.22um超滤膜超滤），再浓缩至1ml左右，连续三次，之后一次的浓缩终体积根据需要的蛋白浓度而定，一般不多于500ul，也有浓缩至200ul以内的情况。按照每次至少10倍左右的体积浓缩算，三次达到1000倍以上，基本上可以达到换buffer的目的。超滤离心管还可以用于检测样品中的元素、抗体等生物活性分子。苏州外泌体超滤离心管制造厂

超滤离心管是一个快速、便捷的方法来从混合物中分离和提取大分子，如蛋白质、核酸等。苏州10K超滤离心管使用方法

使用后用0.1M NaOH泡24h，然后20%乙醇浸泡保存。这个我是听老板们说的，的确乙醇泡完后孔径会增大，基本就是5-10KD较大，也就是说如果你的蛋白在21KD以上，应该没问题。或者可以不用乙醇泡，用NaOH洗之后直接用无菌水保存，每周换一下液体，应该没有问题。看看说明书不就结了！我原来在CRO的时候一直是重复用的，也没见什么不好啊！短期会用的话，用20%的乙醇泡着，回头拼命用millipore的水充干净，然后在用样品缓冲液平衡一下就好，至于有些人说的改变孔径，也没那么大影响的，你至少跟目的蛋白分子量差别3倍的截留分子量才安全的不是吗?1个月以内不用的话，建议用100mM的NaOH保存！更长时间的话加0.02%的叠氮钠，但那个东西强致疾病物，不建议使用。理论上截留目标物，孔径应选1/3~1/5的膜；透过目标物，孔径应选5-10倍的膜。苏州10K超滤离心管使用方法