温州药理学膜片钳实验研究方案

膜片钳的数据如何处理：全细胞式膜片方式使细胞内与浴槽之间的漏流极少。电极本身阻抗(1~10mω)与细胞封接后的阻抗相比较低,这种低接触阻抗使单管电压钳容易实现。电极管内与细胞之间弥散交换与平衡快,因而容易控制细胞内液的成分。细胞钳记录的是许多通道的平均电流,有利于综合分析。如果有目的地将膜电位钳制在某一程度,可做到选择性抑制某些通道的活性而只记录某种通道电流的总和,并可在同一细胞上观察几种不同通道的情况。通过改变内部介质,如改变电极液成分,或在电极液中加入所需药物,通过渗透很快改变胞浆成分并达到平衡,该手段在全细胞记录中广泛应用。内面向外式膜片细胞内外和电极内的溶液均可调控。温州药理学膜片钳实验研究方案

一种提高膜片钳实验效率的方法与流程：膜片钳技术是一种记录通过离子通道的离子电流来反映细胞膜上离子通道分子活动的技术。是用来研究单个离体的活细胞、组织切片或细胞膜片离子流的电生理实验技术。这项技术在可兴奋细胞如神经元、心肌细胞、肌纤维和胰腺细胞的研究中起至关重要的作用，也可用于研究特殊制备的巨型球状体中的细菌离子通道。传统膜片钳技术对实验人员的技术要求非常高，一般地，实验人员需要经过严格的长期的训练，才能准确且快速的操作。全细胞膜片钳模式下有电压钳记录和电流钳记录两种。徐州细胞生物学脑片膜片钳原理及步骤目前电压钳主要用于巨大细胞的全性能电流的研究。

膜片钳技术——打开细胞电生理之门：定义：膜片钳技术被称为研究离子通道的“金标准”，是一种基于电工学和电化学原理的分析手段，可以通过检测细胞的电信号(电生理性质)来研究化学物质、电、机械力等刺激因素对细胞功能的影响，从而帮助揭示细胞在生命活动中的化学和生物学机制。原理：膜片钳技术是用玻璃微电极吸管把只含1-3个离子通道、面积为几个平方微米的细胞膜通过负压吸引封接起来，由于电极与细胞膜的高阻封接，在电极笼罩下的那片膜事实上与膜的其他部分从电学上隔离，因此，此片膜内开放所产生的电流流进玻璃吸管，用一个极为敏感的电流监视器（膜片钳放大器）测量此电流强度，就替代单一离子通道电流。

膜片钳的技术原理：膜片钳技术是用玻璃微电极吸管把只含1-3个离子通道、面积为几个平方微米的细胞膜通过负压吸引封接起来，由于电极尖锐端与细胞膜的高阻封接，在电极尖锐端笼罩下的那片膜事实上与膜的其他部分从电学上隔离，因此，此片膜内开放所产生的电流流进玻璃吸管，用一个极为敏感的电流监视器（膜片钳放大器）测量此电流强度，就表示单一离子通道电流。膜片钳技术的建立，对生物学科学特别是神经科学是一具有重大意义的变革。这是一种以记录通过离子通道的离子电流来反映细胞膜单一的（或多个）的离子通道分子活动的技术。此技术的出现自然将细胞水平和分子水平的生理学研究联系在一起，同时又将神经科学的不同分野必然地融汇在一起，改变了既往各个分野互不联系、互不渗透，阻碍人们全部认识能力的弊端。膜片钳技术的应用范围：在心血管药理方面的研究。

膜片钳技术之全细胞记录的实验流程：（1）仔细检查实验系统各仪器间的线路连接。（2）依次打开各仪器的电源开关和实验软件，检查各参数的初始设置。（3）将样品置于倒置显微镜的载物台上。（4）电极安装。（5）偏移电位的补偿和电极电阻的测定：在微操纵器控制下使微电极进入浴液，电流基线通常会立刻漂离零位，若此时处于VC模式，在维持电压为零时，通过调节偏移电位补偿，使电流基线等于零，此时可见基线上叠加有响应电流方波。（6）细胞封接。（7）电极电容补偿：若无特殊要求，一般将保持电位设为受试细胞静息电位平均值。膜片钳使用操作注意：禁止私拉电线，如有实验要求可与老师及时沟通。温州药理学膜片钳实验研究方案

传统的细胞培养膜片钳系统由人工操作，实验人员在取得元代细胞。温州药理学膜片钳实验研究方案

膜片钳技术之全细胞记录的优点：与传统的细胞内记录相比，全细胞记录也有很多好处，比如电极尖锐端开口较大，电阻只2~20MΩ，易于进行电压/电流钳制，噪声很大程度下降，电极电压降也变得很小，补偿非常容易。与单通道记录相比，单通道记录无法获得整个细胞的功能变化信息，而全细胞记录（尤其是脑片或在体记录）所获信息则能反映细胞功能（甚至细胞之间信息传递）的改变，加之易于更换细胞外液，所以，全细胞记录更适用于对离子通道的药理学研究，即加各种通道blocker啦，激动剂啦之类的。温州药理学膜片钳实验研究方案

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